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申请/专利权人：南京工业大学

摘要：本发明公开了一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌，该大肠杆菌fimH基因失活。本发明进一步提供敲除fimH基因的重组大肠杆菌的构建方法及该重组大肠杆菌在发酵生产氨基酸或有机酸中的应用。本发明借鉴医学上的致病性大肠杆菌形成生物膜的细胞相较于游离的细胞更适应极端环境，在已知fim操纵子调控的fimH基因可以调控大肠杆菌生物膜的形成，通过转录组分析发现了敲除fimH基因后氨基酸及有机酸代谢通路的变化，为后期工业化过程中筛选其他高产氨基酸有机酸的重组菌株做好铺垫，最终达到提高产量、发酵速率和糖转化率的目的。

主权项：1.一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌在发酵生产氨基酸中的应用，其特征在于，该大肠杆菌fimH基因失活，所述原始大肠杆菌为CIBTS1688；所述氨基酸为赖氨酸或甲硫氨酸。

全文数据：一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌及其构建方法与应用技术领域本发明涉及基因重组，具体涉及一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌及其构建方法与应用。背景技术氨基酸在工业生产中应用十分广泛，例如动物饲料添加剂、人类食物调味品以及化妆品和医疗产品的原料。三羧酸循环中，如富马酸和柠檬酸等有机酸在食品添加剂、化学制造及医疗产品领域亦有其广泛应用。目前氨基酸和有机酸的生产的主要方法有三种：微生物发酵法、化学合成法以及酶法。微生物发酵法以其具有生产原料来源广泛、成本低、在生产过程中对环境污染较小、操作容易安全、菌种多种多样并且可以进行大规模生产等优势，现已成为氨基酸和有机酸生产的主流方法。随着分子生物学技术的成熟和发展，运用基因工程技术对菌株的氨基酸和有机酸代谢途径进行分子改造，成为当今获得氨基酸和有机酸高产菌株的有效手段。大肠杆菌作为一种最常用基因工程菌，具有生长快速且稳定、代谢通路清晰、成本低和基因编辑工具易获取等特点。虽然利用大肠杆菌生产苏氨酸普遍运用到微生物发酵实验中，但相对于氨基酸和有机酸行业的需求，其速率依然较慢。因此基因工程菌高产氨基酸的改造成为生产应用中的关键。菌毛在大肠杆菌中主要负责细胞的运动，其主要作用是负责细菌细胞之间、细菌与非生物表面的黏附，并且与生物膜的形成和DNA的转移等相关联。大肠杆菌I型菌毛是重要的黏附细胞器，该菌毛由fim操纵子编码，由9个基因组成，分别是fimA、fimB、fimC、fimD、fimE、fimF、fimG、fimH、fimS，这些基因是I型菌毛的主要结构单位，是菌毛重要部分。生物膜Biofilm是一种复杂的细胞群落、由细胞外基质形成了复杂的生物聚集体，具有保证细菌在极端环境下生存的能力。大肠杆菌就可以通过菌毛的运动和黏附逐渐形成不可逆的粘附于非生物或生物表面的生物膜。发明内容发明目的：本发明构建了一种敲除生物膜关键基因fimH的重组大肠杆菌，通过原始菌和敲除菌株的全基因转录组分析，证实了改造fimH基因可以影响氨基酸和有机酸代谢途径流。技术方案：本发明提供了一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌，该大肠杆菌fimH基因失活。所述大肠杆菌为CIBTS1688。大肠杆菌CIBTS1688赠自中国科学院上海生命科学研究院，所述大肠杆菌CIBTS1688已保藏于中国典型培养物保藏中心，保藏编号为CCTCCNO:M2015233，菌株号为CIBTS1688，其具体信息已在申请号为2015101990361的发明专利中公开。所述大肠杆菌的fimH基因被卡那霉素抗性基因替换。本发明进一步提供敲除fimH基因的重组大肠杆菌的构建方法，包括以下步骤：1将质粒pKD46电转入原始大肠杆菌中，筛选出带有pKD46质粒的重组菌，培养重组菌，用L-阿拉伯糖诱导，再将L-阿拉伯糖诱导后的重组菌细胞制备成感受态细胞；2以质粒pKD4为模板，以下面所示的核苷酸序列为引物，PCR扩增得到带有卡那霉素抗性基因序列的敲除片段，所述敲除片段的核苷酸序列如SEQIDNO：1所示，胶回收敲除片段；引物fimH-kan-F：GATTAGCATCACCTATACCTACAGCTGAACCCGAAGAGATGATTGTAATGGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC引物fimH-kan-R：TACCAGCATTAGCAATGTCCTGTGATTTCTTTATTGATAAACAAAAGTCAGCCATGGTCCATATGAATATCCTCC。3将步骤2纯化得到的敲除片段电转入步骤1得到的的感受态细胞中，以卡那霉素为抗性标记，筛选得到敲除fimH基因的重组大肠杆菌。本发明进一步提供敲除fimH基因的重组大肠杆菌在发酵生产氨基酸中的应用。优选地，所述氨基酸为赖氨酸和甲硫氨酸。本发明进一步提供敲除fimH基因的重组大肠杆菌在发酵生产有机酸中的应用。优选地，所述有机酸为乙酸、苹果酸、富马酸或丁二酸。发酵条件如下：发酵温度为25-37℃，发酵时间为30-32h。有益效果：本发明借鉴医学上的致病性大肠杆菌形成生物膜的细胞相较于游离的细胞更适应极端环境，在已知fim操纵子调控的fimH基因可以调控大肠杆菌生物膜的形成，通过转录组分析发现了敲除fimH基因后氨基酸及有机酸代谢通路的变化，为未来敲除fimH基因分子改造筛选出其他高产氨基酸的重组菌株提供基础，达到提高产量、发酵速率和糖转化率的目的。附图说明图1为RED重组敲除原理；图2为转录组分析流程图；图3为fimH基因的敲除与生物膜相关基因的分析；图4为fimH基因与氨基酸和有机酸代谢相关基因的分析。具体实施方式实施例1构建敲除fimH基因的重组大肠杆菌1、提取敲除质粒pKD46和pKD4：将带有质粒pKD46的大肠杆菌DH5α购自淼灵质粒平台甘油菌接种于5mL的LB液体培养基含有100μgmL氨苄霉素，30℃培养过夜；用2.0mL离心管收集细胞，10000rpm离心2min，弃上清液；依照Corning生命科学有效公司的AxyPrep质粒DNA小量试剂盒说明书中的步骤进行操作，提取质粒pKD46。提取出的质粒于-20℃保存。LB液体培养基含有100μgmL氨苄霉素配方如下：酵母粉5gL，蛋白胨10gL，氯化钠10gL，氨苄霉素100μgmL。将带有质粒pKD4的大肠杆菌DH5α购自淼灵质粒平台甘油菌接种于5mL的LB液体培养基含50μgmL卡那霉素，37℃培养过夜；用2.0mL离心管收集细胞，10000rpm离心2min，弃上清液；依照Corning生命科学有效公司的AxyPrep质粒DNA小量试剂盒说明书中的步骤进行操作，提取质粒pKD4。2、制备大肠杆菌CIBTS1688-pKD46感受态：步骤1将质粒pKD46转入大肠杆菌CIBTS1688：将10μL的pKD46质粒加入到大肠杆菌CIBTS1688的感受态中，冰上预冷10min；加入预冷的电转杯中，电转条件：25μF、200Ω、2.5kv；电转完成后立即加入900ml的LB液体培养基中，30℃，摇床180rpm培养1-2h；取100μl培养液涂布LB抗性平板50μgml卡那霉素，30℃培养16h；挑取单菌落，进行菌落PCR验证，并测序。步骤2将步骤1构建成功的菌株大肠杆菌CIBTS1688-pKD46接种于LB液体抗性培养基50μgml卡那霉素中，30℃培养16h；按照1％的比例转接于100mL的LB液体抗性培养基50μgml卡那霉素中，30℃200rpm培养至OD600＝0.6左右，并在培养终止前2h加入L-阿拉伯糖，终浓度1mmolL；将菌液放入4℃、4000rpm条件下离心5min，收集菌体；用预冷的10％甘油离心洗涤3次，浓缩100倍成1ml制成感受态，分装每管100μl，-80℃保存。3、敲除片段的构建：敲除fimH基因的构建采用大肠杆菌经典的RED重组技术敲除方法。将目的基因的序列用敲除片段组成由质粒pKD4上的卡那霉素抗性基因序列和带有目的基因的短同源臂，核苷酸序列如SEQIDNO：1所示进行替换，从而实现基因敲除的目的。原理示意图见图1。以质粒pKD4模板，设计敲除片段引物，PCR技术扩增带有短同源臂的Kan抗性的敲除片段，PCR扩增体系见表1。snapGene软件设计敲除片段引物，引物由苏州金唯智公司合成，引物核苷酸序列如下所示。引物fimH-kan-F：GATTAGCATCACCTATACCTACAGCTGAACCCGAAGAGATGATTGTAATGGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC引物fimH-kan-R：TACCAGCATTAGCAATGTCCTGTGATTTCTTTATTGATAAACAAAAGTCAGCCATGGTCCATATGAATATCCTCC。表1敲除片段PCR扩增体系组分体积μL生产厂家10×PCRbuffer25μLTOYOBO公司dNTP150mM10μLTOYOBO公司引物fimH-kan-F1.5μL金唯智公司引物fimH—kan-R1.5μL金唯智公司模板基因组1.0μLAxygen基因组提取试剂盒KOD酶1.0μLTOYOBO公司无菌水10μL分装成每管25μL。PCR条件：1变性98℃，2min；2退火48-56℃，30s；延伸68℃，30s，共35个循环；3完全延伸68℃，10min。PCR产物经Axygen胶回收试剂盒纯化后，用于后续转化实验。4、敲除片段的转化与转化子的筛选：将上述步骤纯化后的敲除片段加入到大肠杆菌CIBTS1688-pKD46的感受态中，轻微混匀，于冰上放置15min，转入电转杯，电转的条件为25μF、200Ω、2.5kv，电转完成后立即加入900mL的LB液体培养基180rpm，37℃培养2h，取500μL涂布于LB抗性平板50μgmL卡那霉素37℃过夜培养，直至长出单菌落。挑取单菌落，进行菌落PCR及测序，fimH基因序列如SEQIDNO：2所示，最终得到目的菌株CIBTS1688-ΔfimH。实施例2构建过表达fimH基因的重组大肠杆菌1、目的基因fimH的扩增：以提取的大肠杆菌CIBTS1688基因组为模板，对基因fimH进行扩增。根据NCBI上Escherichiacolistr.K-12substr.MG1655的fimH基因序列通过snapgene软件设计扩增所用的引物，其中，引物包括XbaI和NcoI限制性酶切位点，用于后续与质粒pET28a相连。引物合成由江苏省苏州市金唯智公司合成。引物名称及序列：fimH-F：GGATAACAATTCCCCTCTAGAATGAAACGAGTTATTACCCTGTTTGfimH-R：GATGATGGCTGCTGCCCATGGTTATTGATAAACAAAAGTCACGCCAPCR反应体系见表2。表2目的基因fimH扩增PCR体系组分体积μL生产厂家10×PCRbuffer25μLTOYOBO公司dNTP150mM10μLTOYOBO公司引物fimH-F1.5μL金唯智公司引物fimH-R1.5μL金唯智公司模板基因组1.0μLAxygen基因组提取试剂盒KOD酶1.0μLTOYOBO公司无菌水10μL分装成每管25μL。PCR条件：1变性98℃，2min；2退火48-56℃，30s；延伸68℃，30s，共35个循环；3完全延伸68℃，10min。PCR产物经Axygen胶回收试剂盒纯化后，用于后续实验连接质粒。2、重组质粒的构建1pET28a质粒的提取：将带有质粒pET28a的大肠杆菌DH5α甘油菌购于淼灵质粒平台接种于5mL的LB液体培养基含有卡那霉素抗性50μgmL，37℃培养过夜；用2.0mL离心管收集细胞，10000rpm离心2min，弃上清液；依照Corning生命科学有效公司的AxyPrep质粒DNA小量试剂盒说明书中的步骤进行操作，提取质粒pET28a。2pET28a质粒的线性化：为了将目的基因fimH连接到质粒pET28a上，需要将质粒进行酶切，双酶切反应体系见表3。表3pET28a质粒的酶切体系组分体积μL生产厂家0.1％BSA1gL2μLTakara公司1*Mbuffer2μLTakara公司NcoI酶0.5μLTakara公司Xbal酶0.5μLTakara公司质粒pET28a10μL淼灵质粒平台无菌水5μL酶切的条件为37℃，2-3h，酶切反应结束后将酶切产物进行胶回收，用于后续的实验。3重组质粒的构建：将步骤2得到的纯化线性化载体与目的基因片段按照Vazyme公司II一步克隆试剂盒的说明书的步骤相连接，得到重组质粒pET28a-fimH。一步克隆反应体系见表4，37℃水浴30min后，立即冰浴5min，-20℃保存。构建重组的表达质粒示意图见图2。表4一步克隆反应体系3、重组质粒的转化和筛选将步骤2得到的重组质粒pET28a-fimH10μL转入到100μL大肠杆菌DH5α感受态细胞中，置于冰上30min，42℃水浴锅90s，立即放在冰上10min，加入900mL的LB培养基，37℃摇床180rpm培养40min，而后取150μL涂布于LB抗性平板50μgmL卡那霉素，37℃培养箱培养12h。挑取上述平板单菌落，接种于5mL的LB液体培养基50μgmL卡那霉素中37℃过夜培养后，提质粒pET28a-fimH，经测序无误。测序验证成功后，将质粒pET-28a-fimH按照步骤3转化到原始菌株CIBTS1688的感受态细胞中，挑取单菌落按步骤2中提取质粒的方法进行测序验证，得到构建好的过表达菌株CIBTS1688-fimH*。挑取单菌落提质粒测序验证。实施例3全基因转录组分析原始菌CIBTS1688、敲除菌株CIBTS1688-ΔfimH和过表达菌株CIBTS1688-fimH*1、活化：将CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*从-80℃冰箱取出，试管中准备5mLLB培养基，接种量30μL，于37℃摇床中培养12h，转速200rpm。2、发酵：将CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*转接于发酵培养基中分别37℃发酵30h后，取其发酵液2mL放入2mL的离心管中，迅速放入提前开机设置至4℃的离心机中12000rpm离心2min，弃上清液，立即将此离心管置于液氮中急速冷冻3min，取出后置于-80℃冰箱待用。每组样品准备三个平行。3、转录组分析实验由武汉菲沙基因信息有限公司进行，参考基因组为大肠杆菌E.coliMG1655。具体分析流程见图2。4、数据分析：对不同菌株样本的转录本RPKMReadsPerKilobaseTranscriptomePerMillionMappedReads密度分布进行比较能从整体上检查不同样本之间的RPKM分布的情况。基因差异表达分析是以阈值为FDRfalsediscoveryrate≤0.05，每个基因的logFCfoldchangecondition2condition1的绝对值2的标准来确定为差异表达基因。最后，对GO和KEGGpathway进行富集分析，确定氨基酸及有机酸代谢途径的差异变化。对原始大肠杆菌CIBTS1688和敲除fimH基因大肠杆菌CIBTS1688-ΔfimH进行全基因转录组分析，得出的分析数据由热图软件绘制。参与生物膜生物合成相关关键差异基因的表达量显示了这两株菌之间的显著差异，其中因为fimH基因的敲除从而影响的其他基因可以分为6个不同的簇，如图3所示，分别为Ⅰ型菌毛的黏附素的分泌、鞭毛的组装、curli菌毛的生物合成、糖原的合成和基于AI-2信号分子的群体感应。黏附素的分泌可以更有利于微生物细胞黏附至非生物的表面；鞭毛的组装和curli菌毛的合成促使大肠杆菌菌毛变多；糖原作为生物膜的重要成分，其生物合成也十分重要；当细菌细胞密度达到阈值时，群体感应信号分子AI-2可以激活相关转录因子促进生物膜的形成。参与这些过程的基因在大肠杆菌CIBTS1688-ΔfimH中相较于原始菌均有不同程度的下调。综上，敲除fimH基因可以触发了生物膜相关关键基因的调节，从而减少大肠杆菌CIBTS1688-ΔfimH生物膜的形成。实施例4对CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*进行全基因转录组分析，得出的分析数据由热图软件绘制。参与苏氨酸生物合成相关关键差异基因的表达量显示了这两株菌之间的显著差异，如图4所示。经过转录组富集和KEGG途径分析，在敲除fimH基因的菌株中，乙酸、TCA循环、赖氨酸以及甲硫氨酸的合成途径关键基因如acs、ackA、aspA、lysA、metA、sdhA、sdhC，fumA和sucC等基因都呈现出上调。实施例51活化：将CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*从-80℃冰箱取出，试管中准备5mLLB培养基，接种量30μL，于37℃摇床中培养12h，转速200rpm。2发酵：将培养基分装于500mL摇瓶，装液量100mL，接种量5％，摇床转速200rpm，培养温度37℃。糖耗尽即结束发酵，取样检测产物浓度。转录组数据显示，acs基因编码的乙酰辅酶A合成酶，ackA基因编码的乙酸激酶相较于原始菌的基因表达分别上调了1.2倍和1.4倍，该酶可催化乙酰辅酶A生成乙酸草酰乙酸，乙酸产量经液相检测得到提高，对比见表5。发酵培养基：发酵培养基：葡萄糖30gL，酵母粉5gL，无水磷酸二氢钾2gL，硫酸铵20gL，氯化钠0.8gL，七水合硫酸铁0.2gL，五水合硫酸锰0.2gL，七水合硫酸镁0.8gL，维生素B1200μgL，碳酸钙15gL。表5CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*乙酸产量及转录组基因表达量对比实施例6活化和发酵条件同实施例5，糖耗尽即结束发酵，取样检测产物浓度。转录组数据显示，lysA基因编码的二氨基庚酸脱羧酶相较于原始菌的基因表达上调了2.4倍，该酶可催化生成赖氨酸，赖氨酸产量经液相检测得到提高，对比见表6。表6CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*赖氨酸产量及转录组基因表达量对比实施例7活化和发酵条件同实施例5，糖耗尽即结束发酵，取样检测产物浓度。转录组数据显示，metA基因编码的高丝氨酸琥珀酰转移酶相较于原始菌的基因表达上调了2.2倍，该酶可催化生成甲硫氨酸，甲硫氨酸产量经液相检测得到提高，对比见表7。表7CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*甲硫氨酸产量及转录组基因表达量对比实施例8活化和发酵条件同实施例5，糖耗尽即结束发酵，取样检测产物浓度。转录组数据显示，fumA基因编码的苹果酸酶A相较于原始菌的基因表达上调了3.4倍，该酶可催化富马酸生成苹果酸，苹果酸产量经液相检测得到提高，对比见表8。表8CIBTS1688、CIBTS1688-ΔfimH和CIBTS1688-fimH*苹果酸产量及转录组基因表达量对比实施例9活化和发酵条件同实施例5，糖耗尽即结束发酵，取样检测产物浓度。转录组数据显示，sdhA、sdhC基因编码的醌氧化还原酶相较于原始菌的基因表达分别上调了1.8倍和2.5倍，该酶可催化丁二酸生成富马酸，富马酸产量经液相检测得到提高，对比见表9。表9原始菌和敲除fimH菌株富马酸产量及转录组基因表达量对比实施例10活化和发酵条件同实施例5，糖耗尽即结束发酵，取样检测产物浓度。转录组数据显示，sucC、sucD基因编码的琥珀酰辅酶A合成酶相较于原始菌的基因表达分别上调了2.3倍和2.7倍，该酶可催化生成丁二酸，丁二酸产量经液相检测得到提高，对比见表10。表10原始菌和敲除fimH菌株富马酸产量及转录组基因表达量对比序列表南京工业大学一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌及其构建方法与应用2SIPOSequenceListing1.011572DNA人工序列ArtificialSequence1gattagcatcacctatacctacagctgaacccgaagagatgattgtaatggtgtaggctg60gagctgcttcgaagttcctatactttctagagaataggaacttcggaataggaacttcaa120gatcccctcacgctgccgcaagcactcagggcgcaagggctgctaaaggaagcggaacac180gtagaaagccagtccgcagaaacggtgctgaccccggatgaatgtcagctactgggctat240ctggacaagggaaaacgcaagcgcaaagagaaagcaggtagcttgcagtgggcttacatg300gcgatagctagactgggcggttttatggacagcaagcgaaccggaattgccagctggggc360gccctctggtaaggttgggaagccctgcaaagtaaactggatggctttcttgccgccaag420gatctgatggcgcaggggatcaagatctgatcaagagacaggatgaggatcgtttcgcat480gattgaacaagatggattgcacgcaggttctccggccgcttgggtggagaggctattcgg540ctatgactgggcacaacagacaatcggctgctctgatgccgccgtgttccggctgtcagc600gcaggggcgcccggttctttttgtcaagaccgacctgtccggtgccctgaatgaactgca660ggacgaggcagcgcggctatcgtggctggccacgacgggcgttccttgcgcagctgtgct720cgacgttgtcactgaagcgggaagggactggctgctattgggcgaagtgccggggcagga780tctcctgtcatctcaccttgctcctgccgagaaagtatccatcatggctgatgcaatgcg840gcggctgcatacgcttgatccggctacctgcccattcgaccaccaagcgaaacatcgcat900cgagcgagcacgtactcggatggaagccggtcttgtcgatcaggatgatctggacgaaga960gcatcaggggctcgcgccagccgaactgttcgccaggctcaaggcgcgcatgcccgacgg1020cgaggatctcgtcgtgacccatggcgatgcctgcttgccgaatatcatggtggaaaatgg1080ccgcttttctggattcatcgactgtggccggctgggtgtggcggaccgctatcaggacat1140agcgttggctacccgtgatattgctgaagagcttggcggcgaatgggctgaccgcttcct1200cgtgctttacggtatcgccgctcccgattcgcagcgcatcgccttctatcgccttcttga1260cgagttcttctgagcgggactctggggttcgaaatgaccgaccaagcgacgcccaacctg1320ccatcacgagatttcgattccaccgccgccttctatgaaaggttgggcttcggaatcgtt1380ttccgggacgccggctggatgatcctccagcgcggggatctcatgctggagttcttcgcc1440caccccagcttcaaaagcgctctgaagttcctatactttctagagaataggaacttctac1500cagcattagcaatgtcctgtgatttctttattgataaacaaaagtcagccatggtccata1560tgaatatcctcc15722903DNA大肠杆菌Escherichiacoli2atgaaacgagttattaccctgtttgctgtactgctgatgggctggtcggtaaatgcctgg60tcattcgcctgtaaaaccgccaatggtaccgctatccctattggcggtggcagcgccaat120gtttatgtaaaccttgcgcccgtcgtgaatgtggggcaaaacctggtcgtggatctttcg180acgcaaatcttttgccataacgattatccggaaaccattacagactatgtcacactgcaa240cgaggctcggcttatggcggcgtgttatctaatttttccgggaccgtaaaatatagtggc300agtagctatccatttcctaccaccagcgaaacgccgcgcgttgtttataattcgagaacg360gataagccgtggccggtggcgctttatttgacgcctgtgagcagtgcgggcggggtggcg420attaaagctggctcattaattgccgtgcttattttgcgacagaccaacaactataacagc480gatgatttccagtttgtgtggaatatttacgccaataatgatgtggtggtgcctactggc540ggctgcgatgtttctgctcgtgatgtcaccgttactctgccggactaccctggttcagtg600ccaattcctcttaccgtttattgtgcgaaaagccaaaacctggggtattacctctccggc660acaaccgcagatgcgggcaactcgattttcaccaataccgcgtcgttttcacctgcacag720ggcgtcggcgtacagttgacgcgcaacggtacgattattccagcgaataacacggtatcg780ttaggagcagtagggacttcggcggtgagtctgggattaacggcaaattatgcacgtacc840ggagggcaggtgactgcagggaatgtgcaatcgattattggcgtgacttttgtttatcaa900taa903

权利要求：1.一种敲除fimH基因的重组大肠杆菌，其特征在于，该大肠杆菌fimH基因失活。2.根据权利要求1所述的重组大肠杆菌，其特征在于，所述大肠杆菌为CIBTS1688。3.根据权利要求1所述的重组大肠杆菌，其特征在于，所述大肠杆菌的fimH基因被卡那霉素抗性基因替换。4.权利要求1-3任意一项所述重组大肠杆菌的构建方法，其特征在于，包括以下步骤：1将质粒pKD46电转入原始大肠杆菌中，筛选出带有pKD46质粒的重组菌，培养重组菌，用L-阿拉伯糖诱导，再将L-阿拉伯糖诱导后的重组菌细胞制备成感受态细胞；2以质粒pKD4为模板，PCR扩增得到带有卡那霉素抗性基因序列的敲除片段，所述敲除片段的核苷酸序列如SEQIDNO：1所示，胶回收敲除片段；3将步骤2纯化得到的敲除片段电转入步骤1得到的的感受态细胞中，以卡那霉素为抗性标记，筛选得到敲除fimH基因的重组大肠杆菌。5.根据权利要求4所述的构建方法，其特征在于，步骤1中所述原始大肠杆菌为CIBTS1688。6.根据权利要求4所述的构建方法，其特征在于，步骤2中所述PCR扩增使用的引物核苷酸序列如下：引物fimH-kan-F：GATTAGCATCACCTATACCTACAGCTGAACCCGAAGAGATGATTGTAATGGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC引物fimH-kan-R：TACCAGCATTAGCAATGTCCTGTGATTTCTTTATTGATAAACAAAAGTCAGCCATGGTCCATATGAATATCCTCC。7.权利要求1-3任意一项所述重组大肠杆菌在发酵生产氨基酸中的应用。8.根据权利要求7所述的应用，其特征在于，所述氨基酸为赖氨酸或甲硫氨酸。9.权利要求1-3任意一项所述重组大肠杆菌在发酵生产有机酸中的应用。10.根据权利要求9所述的应用，其特征在于，所述有机酸为乙酸、苹果酸、富马酸或丁二酸。

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