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申请/专利权人：中国农业科学院北京畜牧兽医研究所

摘要：本发明公开了牛传染性鼻气管炎病毒IBRV‑B株及应用，本发明的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV‑B株具有免疫原性好、培养特性好等优点，将本发明的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV‑B株接种MDBK细胞，收获培养物，用β‑丙内酯β‑propiolactone灭活后，与法国赛比克公司的商品化MontanideTMISA15AVG佐剂混合乳化制成牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗。实验证明，使用本发明制备得到的牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗免疫断奶健康阴性牛能够预防由牛传染性鼻气管炎病毒引起的疾病，而且此疫苗具有安全、产生抗体快、免疫期持久等优点。

主权项：1.一株牛传染性鼻气管炎病毒，其特征在于，所述牛传染性鼻气管炎病毒命名为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株，保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，其菌种保藏编号为：CGMCCNo.14294。

全文数据：牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株及其应用技术领域[0001]本发明属于生物领域，更具体的，属于生物疫苗领域，涉及一种牛传染性鼻气管炎病毒及其应用，特别涉及一株自行分离得到的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株以及由该病毒株制备得到的灭活疫苗。背景技术[0002]传染性牛鼻气管炎病毒Infectiousbovinerhinotracheitisvirus，IBRV可引起牛发生急性、热性、接触性传染病，表现为上呼吸道及气管黏膜发炎、呼吸困难、流鼻涕等症状，还可引起脓胞性外阴炎、阴道炎、龟头炎、结膜炎、流产、幼牛脑膜炎、乳腺炎、子宫炎等症状。该病最早20世纪5〇年代初在美国科罗拉多州发现，随后其他各州也相继发现该病。1956年Madm等首次从病牛中分离出病毒，Huck1971年确认IBRV属于疱瘆病毒，目前呈世界性流行。1980年我国首次从新西兰进口种牛中发现该病，首次报道有此病毒存在，该病造成较大经济损失。[0003]目前疫苗包括灭活苗、弱毒苗、亚单位苗及基因缺失标记苗。澳大利亚有两种疫苗上市即RhinogardV155株和IBEPUR亚单位疫苗），在澳大利亚有超过2百万的牛巳经接种了。各种传统疫苗和标记疫苗（用以区分免疫群和非免疫群在海外均可获取，澳大利亚常常联合使用针对其它病原的疫苗，即使用多价苗来共同防治牛呼吸系统疾病综合症BRD。目前国内市场尚无自主研发的相关疫苗用于该病的防治。[0004]本发明的发明人在2015年从北京市某牛场分离到一株牛传染性鼻气管炎病毒，经实验室鉴定为强毒株，驯化克隆后的毒株命名为IBRV-B株。利用IBRV-B株，开展了牛传染性鼻气管炎病毒病灭活疫苗的研制开发工作，筛选培育出免疫原性良好、效价稳定的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株，选择了最适合该病毒增殖的MDBK细胞和符合制造疫苗的灭活剂、佐剂及其他条件。对制品的生产工艺、安全性、保护率、免疫程序、最小剂量、抗体持续期和保存期等都进行了试验测定，并获得了大量的试验数据，证明本疫苗安全有效。在此基础上，进行了中试生产，经抽样检验，全部符合拟定的质量标准，并对中试产品进行了安全试验和效力试验，其结果也证实本疫苗能有效地预防由牛传染性鼻气管炎病毒引起的牛呼吸道疾病，在实验室试验、中间试制的基础上，本发明研制出了牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株灭活疫苗，其结果也证实本疫苗能有效地预防由牛传染性鼻气管炎病毒引起的牛呼吸道疾病，进一步验证了本疫苗的各项质量标准。发明内容[0005]本发明的目的之一是提供一种免疫原性良好、效价稳定的牛传染性鼻气管炎病毒株；[0006]本发明的目的之二是提供所述的牛传染性鼻气管炎病毒株在制备疫苗中的应用；[0007]本发明的目的之三是提供一种由所述的牛传染性鼻气管炎病毒株制备得到的疫苗；LUUU0J不反明的目的乙四是提供所述的疫苗在制备预防牛传染性鼻气管炎病药物中应用。[0009]为了达到上述目的，本发明采用了以下技术手段：[0010]p本发明的发明人在2015年从北京市某牛场分离到一株牛传染性鼻气管炎病毒，经实验室鉴定为强毒株，驯化后的毒株命名为IBRV—B株。本发明的IBRV_B株是从发生典型牛传染性鼻气管炎病毒感染牛中分离获得的，因此与分离到的其它毒株相比在细胞上的增殖滴度高，对牛的免疫原性好。经MDBK细胞传代后作为疫苗毒种，效检用强毒*IBRV—B株第7〜10代。该毒株可以引起MDBK细胞90%以上感染。[0011]本发明的一种牛传染性鼻气管炎病毒，为在MDBK细胞上传代后的第7代病毒株，命名为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株，分类命名为牛传染性鼻气管炎病毒，保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，地址在北京市朝阳区北辰西路丨号院中国科学院微生物研宄所，其菌种保藏编号为:CGMCCNo•14294，保藏日期为2017年06月15日。[0012]本发明还提供了所述的牛传染性鼻气管炎病毒在制备牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗中的应用。[0013]本发明的一种牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗，其特征在于含有灭活后的本发明所述的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株。[0014]在本发明所述的牛传染性鼻气管炎病毒I灭活疫苗中，优选的，所述的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株采用以下方法进行灭活:〇.2%的丙内醋在4°C条件下灭活24小时，然后室温继续灭活24小时。[0015]在本发明中，优选的，所述的其特征在于含有灭活后的本发明所述的牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗是由I5%vv的法国赛比克公司的商品化Montanide™ISA15AVG佐剂和85%vv的用¢-丙内酯灭活的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株乳化后得到。[0016]在本发明中，乳化工艺是采用法国赛比克公司的商品化Montanide™ISA15AVG佐剂，除菌后可直接用于疫苗乳化制备;乳化前将灭活的同批病毒液解冻混合，在无菌室内用匀浆机以200rmin搅拌均匀，然后按照水相抗原与油相佐剂8.5:1.5的体积配比；乳化程序为先将水相放入乳化器中进行搅拌，然后缓缓加入油相佐剂，以800rmin连续搅拌30分钟；生产得到的疫苗属水包油剂型，为了稳定界面和消除气泡，获得最佳乳化效果，需要静止30分钟后分装。[0017]进一步的，本发明还提供了所述的灭活疫苗在制备预防由其特征在于含有灭活后的本发明所述的牛传染性鼻气管炎病毒引起的疾病的生物制品中的用途。[0018]特别地，所述的疾病为健康牛发生的呼吸系统疾病。附图说明[0019]图1为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株负染电镜图像[0020]图2为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株在MDBK细胞上培养48小时的荧光检测结果；[0021]图3为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株感染MDBK细胞后的一步生长曲线。具体实施方式[0022]下面通过实验并结合实施例对本发明做进一步说明，应该理解的是，这些实施例仅用于例证的目的，决不限制本发明的保护范围。[0023]实施例1牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株的分离及培养鉴定[0024]1毒种来源及标准[0025]根据新生物制品申报要求，结合本发明获得的大量的试验数据，参照《中国兽药典》2005年版），对制苗用毒种进行了鉴定，现将试行规程草案）中毒种标准进行以下说明。[0026]1.1毒种来源[0027]制造本品用的毒种为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株，是本发明人在2015年从发病牛自行分离驯化后获得，由于这一毒株是从发生典型牛传染性鼻气管炎病毒感染牛中分离获得的，并且与分离到的其它毒株相比在细胞上的增殖滴度高，对牛的免疫原性好，所以选择其用于疫苗的生产。经MDBK细胞传代后作为疫苗毒种，效检用强毒为IBRV-B株第7〜10代。该毒种为在MDBK细胞上传代后的第7代病毒株，保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，地址在北京市朝阳区北辰西路1号院中国科学院院微生物研宄所，其菌种保藏编号为:CGMCCNo.14294，保藏日期为2017年06月15日。[0028]1.2毒种CGMCCNo.14294标准[0029]1.2.1电镜形态[0030]IBRV-B株颗粒近似球形，有囊膜，呈实心和空心两种形态，其直径约为i5〇nm〜194nm，平均170nm，核衣壳呈轴立体对称的正二十面体，外观呈六角形，囊膜厚薄不对称，形态大小不一，表面附有绒毛状突起见图1。[0031]1.2.2病毒含量[0032]以DMEM培养液将毒种作连续10倍系列稀释，每个稀释度取l〇〇ul加入96孔细胞培养板中，每个稀释度作8个重复，随后加入MDBK细胞，每孔lOOyl细胞含量以3Xl〇5ml，并设正常细胞培养对照，置37°C、含5%的C〇2培养箱中培养，逐日观察细胞病变CPE，细胞圆缩，聚集成葡萄串样群落，在单层细胞上形成空洞则判为CPE。观察7日，记录细胞病变的孔数，按照Reed-Muench法计算病毒的TCID50。结果:每毫升病毒液不低于l〇n’QTCID50。[0033]1.2.3毒力[0034]病毒代次为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株第7〜10代细胞毒;攻毒剂量为每毫升病毒含量应不低于10〃TCID50;程序是健康阴性犊牛4头，鼻内喷雾接种IBRV-B株第7〜10代细胞毒l〇ml，病毒含量分别为IXK^TCIDSO;判定标准是从第2天开始，体温升高，持续升高超过40.0°C平均5d，表现出不同程度的临床症状，表现为精神沉郁，流脓性黏稠鼻液，鼻黏膜红肿有白斑，眼睛分泌脓性分泌物，临床症状持续9d左右。剖检病变主要集中在肺部，胸腺淋巴结增大，气管出血，其他脏器无明显肉眼可见病变。病理切片结果显示，肺脏呈化脓性肺炎，有纤维素性渗出物肺水肿，细支气管管壁破坏，管腔内充满炎细胞，肺组织破坏，可见大量炎细胞和坏死灶。在肺脏、气管和眼周部位组织可分离到病毒。[0035]1.2.4免疫原性[0036]将毒种同步接种MDBK细胞进行增殖，收获病毒液，用¢-丙内酯灭活后，力口Montanide™ISA15AVG佐剂混合乳化制成水包油型灭活疫苗，用健康易感断奶犊牛（IBRV中和抗体效价不高于1:25头，肌肉注射按本规程制苗2ml，设未免对照牛5头，鼻内喷雾接种IBRV-B株各10ml10〃TCID50，攻毒后14日剖杀所有牛。对照组应至少4头出现牛传染性鼻气管炎感染的典型临床症状，免疫组应至少4头保护。[0037]1.2.5纯净检验[0038]对建立的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株的原始种子批第10〜11代、基础种子批第12〜21代和生产种子批第22〜25代进行了细菌、霉菌、支原体检验，并对第11、12和24代次毒种进行了外源病毒的检验，结果表明，本发明建立的原始种子批、基础种子批、生产种子批均无细菌、霉菌、支原体和外源病毒污染，均纯净。[0039]1.2.6特异性[0040]液将毒种稀释至200TCID500•1ml，与灭活的抗牛传染性鼻气管炎病毒特异性血清等量混匀，置37°C中和1小时，同步接种生长良好的MDBK细胞3瓶细胞含量以3X105ml，同时设病毒对照、正常细胞对照和阴性血清对照，置37°C、含5%的C〇2培养箱中，培养5〜7日。中和病毒组和正常细胞对照组均应不出现细胞病变CPE;病毒对照组和阴性血清对照组均应出现CPE。[0041]1.2.7毒种使用代次[0042]将原始分离得到的牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株，在MDBK细胞上连续传40代即在菌种保藏编号为CGMCCNo.14294的毒株基础上连续传代33代），测定了每一代病毒的TCID50,选择第15、20、25、30、35、40代病毒分别灭活后制成疫苗，接种2〜4月龄犊牛，14天后进行攻毒。结果表明，病毒在MDBK细胞上传代，第7代以后包括第7代病毒，即菌种保藏编号为CGMCC此.14294的病毒株）各代次病毒含量稳定，均不低于10111'：050，且中和效价均在32以上，已经达到了做疫苗的标准。攻毒试验表明，第15、20、25、30代病毒制备的疫苗免疫牛在对IBRV-B株攻击的保护性无显著差异，犊牛均健康存活;第35和40代病毒制备的疫苗免疫后攻毒各有2头和1头死亡，而对照组4头犊牛均有不同程度的牛传染性鼻气管炎病毒感染症状。根据以上结果，为保证生产毒种良好的免疫原性和安全性，本发明确定了病毒的传代最高次数在27代，原始毒种为7〜11代，基础毒种为第12〜21代，生产用毒种最高传代次数限制在3代第22〜25代）以内。[0043]1.2.8毒种保存期的确定[0044]将牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株湿毒保存在-20°C和_70°C下，于保存后不同时间取样进行中和效价和TCID50测定，结果显示湿毒于-20°C冻存18个月、于_70°C保存30个月时毒价开始明显下降；冻干毒保存在-20°C和-70°C下，于保存后每年取样进行中和效价和TCID50测定。结果在-20°C保存36个月的病毒的效价略有下降，保存48个月病毒的中和效价和TCID50值明显下降，而在-70°C下保存48个月病毒的中和效价和TCID50没有明显的变化，保存60个月下降明显。考虑到在病毒保存时存在的其他不利因素，保证病毒保存期可靠性，所以将牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株湿毒在-20°C的保存期定为12个月，在_70°C的保存期定为24个月；将牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株冻干毒在-20°C的保存时间定为36个月；冻干毒在-70°C的保存时间为48个月。[0045]2生产用细胞[0046]2.1细胞来源[0047]MDBK细胞，购自中国科学院上海细胞库，由中国农业科学院北京畜牧兽医研宄所保存。[0048]2.2细胞的选择[0049]在病毒的培养过程中本发明选用了传代细胞系MDBK进行病毒的增殖，病毒按病毒感染量值M0I为0.01接种MDBK细胞上的病变时间早，增殖滴度最高，MDBK细胞感染牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株48小时如图2所示，牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株感染MDBK细胞后的一步生长曲线如图3。此种条件下，48小时收获的病毒滴度最高。[0050]2.3细胞系的建立[0051]制苗用细胞系选用MDBK细胞。传代范围控制在40〜55代，本发明建立了原始细胞库、基础细胞库和工作细胞库。其中原始细胞库共分装55瓶;基础细胞库分装370瓶;工作细胞库共分装了350瓶。对各个代次的细胞都按《中国兽药典》附录进行检验，应无细菌、霉菌、支原体和外源病毒的污染。[0052]2.4细胞系的鉴定[0053]根据现行《中国兽药典》附页中有关“生产、检验用细胞标准”规定进行检验，均符合标准。具体见“MDBK细胞系的鉴定试验报告”。[0054]实施例2灭活疫苗的制备[0055]牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株的制备工艺流程是按照目前已经成熟的商品化疫苗制备工艺制备。从实验室制备的3批疫苗和中间试制的5批疫苗质检结果来看，用该工艺流程制备的疫苗产品质量稳定，效检结果完全符合所制定的质量标准。[0056]1病毒液的制备[0057]在病毒繁殖过程中，很多因素会影响细胞及病毒的增殖。经过一系列比较试验，选用细胞培养液血清浓度为10%，维持液血清浓度为2%，能够繁殖稳定的，高滴度的病毒液；另外对培养液的pH值、细胞浓度、病毒接种剂量、收毒时间等进行了比较试验，结果显示病毒繁殖时细胞维持液pH值控制在7•2〜7•4之间、按病毒感染量值M0I为0.01接种MDBK细胞、病毒最佳收获时间为48〜72小时，均能获得高病毒含量的病毒液。[0058]在本实施例中选用细胞培养液中血清浓度S10%，pH值控制在7.3,维持液商品名是DMEM，购自Hyclone公司）中血清浓度为2%，按病毒感染量值M0I为0.01接种牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株第7代病毒株（菌种保藏编号为CGMCCNo•14294种毒于MDBK细胞、病毒收获时间为48小时。[0059]2灭活工艺[0060]选择终浓度为0.1%、0.2%、0.3%、0.4%的甲醛溶液和终浓度为0.1%、0.2%、0.3%、0.4%的丙内酯对牛传染性鼻气管炎病毒进行灭活比较试验，试验结果表明，〇.2%的e-丙内酯在4°C条件下24小时后可将牛传染性鼻气管炎病毒完全灭活，而且，试验结果表明P-丙内酯对细胞的损伤较小；牛传染性鼻气管炎病毒加入0•3%的甲醛溶液，经37°C灭活48小时亦可达到完全灭活病毒的目的；但甲醛具有强刺激性，如果疫苗中残留游离的甲醛进入动物机体，会产生不良反应。因而最终确定用0.2%的丙内酯在4。：条件下灭活牛传染性鼻气管炎病毒24小时后，室温灭活24小时以水解残余的丙内酯。[0061]3乳化工艺[0062]采用法国赛比克公司的商品化MontanideTMISA15AVG佐剂，除菌后可直接用于疫苗乳化制备;乳化前将灭活的同批病毒液解冻混合，在无菌室内用匀浆机以200rmin搅拌均匀，然后按照水相抗原与油相佐剂8•5:1•5的体积配比;乳化程序为先将水相放入乳化器中进行搅拌，然后缓缓加入油相佐剂，以800rmin连续搅拌30分钟;生产得到的疫苗属水包油剂型，为了稳定界面和消除气泡，获得最佳乳化效果，需要静止30分钟后分装。[0063]4半成品检验质量标准[0064]4.1无菌检验[0065]按现行《中国兽药典》附录进行检验，应无菌生长。[0066]4.2病毒含量测定[0067]以DMEM培养液将毒种作连续10倍系列稀释，每个稀释度取100W1加入96孔细胞培养板中，每个稀释度作8个重复，随后加入MDBK细胞，每孔100yl细胞含量以3Xl〇5ml，并设正常细胞培养对照，置37°C、含5%的⑶2培养箱中培养，逐日观察细胞病变CPE，细胞圆缩，聚集成葡萄串样群落，在单层细胞上形成空洞则判为CPE。观察7日，记录细胞病变的孔数，按照Reed-Muench法计算病毒的TCID50。结果:每毫升病毒液不低于l〇11QTCID50。[0068]4.3灭活检验[0069]取灭活后的病毒液，按病毒液与生长液1:10的比例接种于MDBK细胞3瓶细胞含量以3X105ml，3代培养观察5日，对无病变者再盲传2代，同时设病毒对照。结果无细胞病变。实验室生产的3批半成品均合格。[0070]5关于成品检验质量标准[0071]5.1安全检验标准[0072]为了保证疫苗的安全性，本发明对实验室制备的5批疫苗先后进行了“对小白鼠的安全性试验”、“对犊牛单剂量接种、单剂量重复接种、一次性超剂量2倍剂量接种的安全性试验”、“对育肥牛单剂量接种、单剂量重复接种、一次性超剂量2倍剂量接种的安全性试验”、对妊娠母牛单剂量接种、单剂量重复接种、一次性超剂量2倍剂量接种的安全性试验”。试验结果表明：各免疫动物单剂量接种、单剂量重复接种、一次性大剂量接种后，动物状态均良好，采食饮水正常，无异常反应;疫苗接种后对妊娠母牛的繁殖功能也无明显影响。以上试验均证明疫苗是安全的。通过试验观察本发明总结出只要接种疫苗后21日内不出现局部红肿、溃疡、糜烂以及神经萎缩、采食减少等现象，以后就不会出现因为疫苗接种而引起的不良反应，就可以证明疫苗的安全性。因此，在试行规程草案）中规定：用2〜6月龄健康易感犊牛（中和抗体效价不高I:22头，各深部肌肉注射疫苗4ml，另取条件相同的2头牛不接种作为对照，连续观察14天。在观察期内应不出现由疫苗注射引起的任何局部或全身不良反应。[0073]5.2效力检验标准的制定[0074]5.2.1抗体效价与免疫攻毒保护相关性试验[0075]将安全性试验合格的1批牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗151101，按照不同剂量0.5ml头份、lml头份、2ml头份、4ml头份分别免疫2〜6月龄的健康犊牛（中和抗体不高于25头间隔14日免疫2次，未免疫对照组3头，二免14日以后以1〇7.1'：10501111牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株第10代强毒4ml鼻腔内喷雾接种，以确定中和抗体滴度与免疫攻毒保护的相关性。试验结果表明，当血清中和抗体效价在不低于1:32时，犊牛攻毒保护率可80%以上。因而确定疫苗效力检验时，检验标准为二次免疫14日后，其血清中和抗体效价不低于1：32〇[0076]5•2.2最小免疫剂量和最小使用剂量试验[0077]将安全性试验合格的3批牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗151101、151102和1511〇3,按照不同剂量lml头份、2ml头份、4ml头份、6ml头份分别免疫2〜6月龄的健康犊牛（IBRV中和抗体不高于2，于第二次免疫后14日采血进行中和抗体检测。结果显示，以2ml头份剂量免疫犊牛28日后中和抗体效价平均值不低于1:32,而4ml头份以上剂量免疫犊牛28日后中和抗体效价均不低于1:64。根据中和抗体效价与攻毒保护相关性试验结果，确定在免疫后28日牛传染性鼻气管炎病毒中和抗体效价达到1:64以上时，可以完全保护牛传染性鼻气管炎病毒强毒的攻击。考虑到疫苗的保存、运输和使用过程中可能存在的效价降低因素。本发明将牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗（IBRV-B株）的最小免疫剂量确定为2ml头份，使用剂量确定为4.0ml头份。[0078]5.2.3免疫豚鼠与免疫牛中和抗体相关性试验[0079]将实验室生产的3批牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗151101、151102和151103分别免疫豚鼠和犊牛，进行中和抗体效价检测，分析豚鼠与犊牛的中和抗体相关性。结果表明，当豚鼠免疫0•5ml只、犊牛免疫2ml头，28日后其血清中和抗体效价均不低于1:32，二者有明显的平行关系。试验结果证明可以用实验动物豚鼠代替靶动物牛进行效力检验。[0080]因此，根据以上结果，本发明将本产品的效力检验标准定为：[0081]用体重35^〜40%成年豚鼠（18阶中和抗体效价不高于1:25只，各肌肉注射疫苗0.5ml，28日后，连同对照豚鼠4只，一并采血，测定IBRV中和抗体效价。对照豚鼠HI抗体效价应不高于1:2,免疫豚鼠至少应有4只出现抗体反应，且中和抗体效价应不低于1:32。[0082]用3月龄健康易感犊牛（IBRV中和抗体效价不高于1:25头，各深部肌肉注射疫苗2ml，28日后，连同对照牛4头，一并采血，测定IBRV中和抗体效价。对照牛HI抗体效价应不高于2，注苗牛应全部出现抗体反应，且中和抗体效价应不低于1:32。[0083]6抗体消长规律与免疫持续期试验[0084]将安全性试验合格的3批牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗151101、151102和1511〇3分别免疫健康犊牛、妊娠牛和成年牛。为进一步掌握免疫效力及免疫持续期，制定合理的免疫程序，保证免疫牛群保持高而持久的抗体水平，对免疫牛不同时间进行抗体检测，以掌握其抗体消长规律。[0085]试验结果表明，牛群免疫2ml头份，2〜3周后加强免疫一次，28日后其血清中和抗体不低于I:32,免疫后抗体高峰在4〜6个月内，其后抗体水平逐渐下降，至12个月仍达1:32，为保证疫苗的免疫保护效果，确定其免疫持续期为10个月。[0086]7免疫程序的确定[0087]根据牛群免疫后的抗体消长规律、免疫期，同时结合临床上牛传染性鼻气管炎病毒感染的实际情况，本发明确定了牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗IBRV-B株的免疫程序为:每年免疫两次。每次免疫均为2ml头成年牛加倍。[0088]8疫苗的保存期[0089]本发明对实验室制备的3批灭活疫苗（151101、151102和151103保存期进行了试验研宄，将3批疫苗在2〜8°C条件下保存9、12、15、18个月，在各个时间段分别取样对其性状、安全性及免疫效力检测。结果显示，3批疫苗在2〜8。：条件下保存18个月性状不发生明显变化，无菌检验和安全性都符合质量标准的要求。效力检验中151101批疫苗保存18个月样品免疫豚鼠后有一只豚鼠HI抗体效价为1:16;151102和151103批疫苗保存18个月样品免疫牛后均有一头牛血清中和抗体效价为1:16,但免疫牛平均中和抗体水平为1:32,考虑到疫苗在运输和使用过程中造成的效价损耗，本发明将疫苗的保存期定为2〜8°C条件下保存15个月。[0090]9与国内同类商品苗的免疫效力比较[0091]将实验室试制的3批疫苗151101、151102和151103与市售疫苗A批号:20151011和B批号：20150905，分别免疫350g〜400g健康豚鼠及5〜6月龄健康接牛，28日后其血清中和抗体效价均不小于1:32,达到攻毒保护要求，实验室制备的疫苗中和抗体平均值略高于市售A疫苗，明显高于市售B疫苗。[0092]分别在免疫前、免疫后3、6、9、12个月静脉采血分离血清，检测抗体产生情况。结果表明：在免疫后6个月内，实验室试制的疫苗和市售A和B疫苗免疫牛，中和抗体效价均在1:32以上，均能达到攻毒保护要求。而6个月后市售B疫苗免疫牛中和抗体下降明显。[0093]注射3批疫苗151211、151212和151213的接种部位不存在脓肿、结痂等不良反应，而市售A和B疫苗免疫接种部位存在以上的上述不良反应。[0094]以上所述仅为本发明的优选实施例，对本发明而言仅是说明性的，而非限制性的；本领域普通技术人员理解，在本发明权利要求所限定的精神和范围内可对其进行许多改变，修改，甚至等效变更，但都将落入本发明的保护范围内。

权利要求：1.一株牛传染性鼻气管炎病毒，其特征在于，所述牛传染性鼻气管炎病毒命名为牛传染性鼻气管炎病毒IBRV-B株，保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，其菌种保藏编号为:CGMCCNo.14294。2.权利要求1所述的牛传染性鼻气管炎病毒在制备牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗中的应用。3.—种牛传染性鼻气管炎病毒灭活疫苗，其特征在于含有灭活后的权利要求1所述的牛传染性鼻气管炎病毒。4.如权利要求3所述的灭活疫苗，其特征在于所述的灭活是指将权利要求1所述的牛传染性鼻气管炎病毒采用〇.2%的f丙内酯在4°C条件下灭活24小时，然后室温灭活24小时水解残留的¢-丙内酯。5.权利要求3或4所述的灭活疫苗在制备预防由牛传染性鼻气管炎病毒引起的疾病的生物制品药物中的应用。6.如权利要求5所述的应用，其特征在于所述的疾病为健康阴性牛发生的呼吸道疾病。

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