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申请/专利权人：中国科学院遗传与发育生物学研究所

摘要：本发明公开了蛋白质TaNAC2在调控植物种子萌发中的应用。具体的，本发明保护蛋白质TaNAC2在调控植物种子的萌发速率和或调控植物种子的萌发率中的应用。蛋白质TaNAC2为氨基酸序列是SEQ ID No.4、SEQ ID No.12或SEQ ID No.14所示的蛋白质。实验证明，小麦种子萌发速率提高和萌发率提高的表型与TaNAC2基因的过表达有关，TaNAC2基因在调控小麦种子的萌发速率和萌发率中具有重要作用。因此，可以利用蛋白质TaNAC2调控植物种子萌发。本发明对提高植物种子萌发率和或萌发速率的新材料的选育具有重要应用价值。

主权项：1.蛋白质TaNAC2在调控植物种子的萌发速率和或调控植物种子的萌发率中的应用；所述蛋白质TaNAC2自N末端至C末端依次包括元件甲、元件乙、元件丙、元件丁和元件戊；所述元件甲的氨基酸序列如SEQ ID No.4自N末端起第1至185位所示；所述元件乙的氨基酸序列如SEQ ID No.4自N末端起第199至240位所示；所述元件丙的氨基酸序列如SEQ ID No.4自N末端起第243至271位所示；所述元件丁的氨基酸序列如SEQ ID No.4自N末端起第273至314位所示；所述元件戊的氨基酸序列如SEQ ID No.4自N末端起第316至329位所示。

全文数据：蛋白质TaNAC2在调控植物种子萌发中的应用技术领域[0001]本发明属于生物技术领域，具体涉及蛋白质TaNAC2在调控植物种子萌发中的应用。背景技术[0002]种子是植物最重要的生殖器官，种子的萌发是整个植物生命周期的起始，种子萌发过程受到自然环境包括水、光、温度等）、营养物质、病害、物理伤害等因素的调控。种子萌发过程起始于干种子的吸胀作用，内部发生一系列生理生化变化后，胚根冲出种皮后萌发过程结束，并开始植物幼苗建成Rajjouetal.，2012。对于农作物来说，种子除了是最重要的经济来源外，种子萌发率的快慢和均一性对农业生产也有重要影响。发明内容[0003]本发明所要解决的技术问题是如何提高植物种子的萌发速率和或萌发率。[0004]为解决上述技术问题，本发明首先提供了蛋白质TaNAC2在调控植物种子的萌发速率和或调控植物种子的萌发率中的应用。[0005]上述应用中，所述蛋白质TaNAC2自N末端至C末端依次可包括元件甲、元件乙、元件丙、元件丁和元件戊；[0006]所述元件甲的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第1至185位所示；[0007]所述元件乙的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第199至240位所示；[0008]所述元件丙的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第243至271位所示；[0009]所述元件丁的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第273至314位所示；[0010]所述元件戊的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第316至329位所示。[0011]上述应用中，所述蛋白质TaNAC2可为al或a2或a3或a4或a5:[0012]al氣基酸序列是SEQIDNo.4所不的蛋白质；[0013]a2氨基酸序列是SEQIDNo.12所示的蛋白质；[00M]a3氣基酸序列是SEQIDNo.14所不的蛋白质；[0015]a4在SEQIDNo.4、SEQIDNo.12或SEQIDNo.14所示的蛋白质的N端或和C端连接标签得到的融合蛋白质；[0016]a5将SEQIDNo.4、SEQIDNo.12或SEQIDNo.14所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和或缺失和或添加得到的与植物种子的萌发速率和或植物种子的萌发率相关的蛋白质。[0017]其中，SEQIDNo.4由329个氨基酸残基组成。SEQIDNo.12由327个氨基酸残基组成。SEQIDNo.14由327个氨基酸残基组成。[0018]为了使al中的蛋白质便于纯化，可在SEQIDNo.4所示的蛋白质的氨基末端或羧基末端连接上如表1所示的标签。为了使a2中的蛋白质便于纯化，可在SEQIDNo.12所示的蛋白质的氨基末端或羧基末端连接上如表1所示的标签。为了使a3中的蛋白质便于纯化，可在SEQIDNo.14所示的蛋白质的氨基末端或羧基末端连接上如表1所示的标签。[0019]表1.标签的序列[0020][0021]上述a5中的蛋白质，所述一个或几个氨基酸残基的取代和或缺失和或添加为不超过10个氨基酸残基的取代和或缺失和或添加。[0022]上述a5中的蛋白质可人工合成，也可先合成其编码基因，再进行生物表达得到。[0023]上述a5中的蛋白质的编码基因可通过将SEQIDNo.3自5’末端起第7至993位所示的DNA序列、SEQIDNo.11所示的DNA序列或SEQIDNo.13所示的DNA序列中缺失一个或几个氨基酸残基的密码子，和或进行一个或几个碱基对的错义突变，和或在其57端和或3'端连上表1所示的标签的编码序列得到。[0024]编码所述蛋白质TaNAC2的核酸分子在调控植物种子的萌发速率和或调控植物种子的萌发率中的应用也属于本发明的保护范围。[0025]所述编码TaNAC2的核酸分子可为如下bl或b2或b3或b4或b5或b6所示的DNA分子：[0026]bl编码区如SEQIDNo.3自5’末端起第7至993位所示的DNA分子；[0027]b2核苷酸序列是SEQIDNo.3所示的DNA分子；[0028]b3核苷酸序列是SEQIDNo.11所示的DNA分子；[0029]b4核苷酸序列是SEQIDNo.13所示的DNA分子；[0030]b5与bl或b2或b3或b4限定的核苷酸序列具有75%或75%以上同一性，来源于小麦且编码所述蛋白质TaNAC2的DNA分子；[0031]b6在严格条件下与bl或b2或b3或b4限定的核苷酸序列杂交，来源于小麦且编码所述蛋白质TaNAC2的DNA分子。[0032]其中，所述核酸分子可以是DNA，如cDNA、基因组DNA或重组DNA;所述核酸分子也可以是RNA，如mRNA或hnRNA等。[0033]其中，SEQIDNo.3由999个核苷酸组成，SEQIDNo.3自5’末端起第7至993位所示的核苷酸编码SEQIDNo.4所示的氨基酸序列。SEQIDNo.11由984个核苷酸组成，SEQIDNo.11所示的核苷酸编码SEQIDNo.12所示的氨基酸序列。SEQIDNo.13由984个核苷酸组成，SEQIDNo.13所示的核苷酸编码SEQIDNo.14所示的氨基酸序列。[0034]上述应用中，所述调控植物种子的萌发速率可为提高植物种子的萌发速率或降低植物种子的萌发速率。[0035]上述应用中，所述调控植物种子的萌发率可为提高植物种子的萌发率或降低植物种子的萌发率。[0036]上述应用中，所述植物可为如下cl至c6中的任一种:cl双子叶植物;c2单子叶植物;c3禾本科植物;c4小麦;c5中国春小麦;c6小麦陇春23。[0037]本发明还保护培育转基因植物的方法一或培育转基因植物的方法二。[0038]培育转基因植物的方法一，可包括如下步骤：向出发植物中导入提高所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性的物质，得到转基因植物;与出发植物相比，转基因植物的种子的萌发速率和或种子的萌发率均提高。[0039]培育转基因植物的方法二，可包括如下步骤：向出发植物中导入降低所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性的物质，得到转基因植物;与出发植物相比，转基因植物的种子的萌发速率和或种子的萌发率均降低。[0040]本发明还保护植物育种方法一或植物育种方法二。[0041]所述植物育种方法一，可包括如下步骤:提高植物中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性，从而种子的萌发速率和或种子的萌发率均提高。[0042]所述植物育种方法二，可包括如下步骤:降低植物中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性，从而种子的萌发速率和或种子的萌发率均降低。[0043]上述方法中，所述“提高植物中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性”可通过多拷贝、改变启动子、调控因子、转基因等本领域熟知的方法，达到增加植物中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性的效果。[0044]上述方法中，所述“降低植物中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性”可通过RNA干扰、同源重组、基因敲除、基因定点编辑等本领域熟知的方法，达到降低植物中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性的目的。[0045]上述方法中，所述“向出发植物中导入提高所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性的物质”可通过向出发植物中导入编码所述蛋白质TaNAC2的核酸分子实现。[0046]上述方法中，所述编码TaNAC2的核酸分子可为如下bl或b2或b3或b4或b5或b6所示的DNA分子：[0047]bl编码区如SEQIDNo.3自5’末端起第7至993位所示的DNA分子；[0048]b2核苷酸序列是SEQIDNo.3所示的DNA分子；[0049]b3核苷酸序列是SEQIDNo.11所示的DNA分子；[0050]b4核苷酸序列是SEQIDNo.13所示的DNA分子；[0051]b5与bl或b2或b3或b4限定的核苷酸序列具有75%或75%以上同一性，来源于小麦且编码所述蛋白质TaNAC2的DNA分子；[0052]b6在严格条件下与bl或b2或b3或b4限定的核苷酸序列杂交，来源于小麦且编码所述蛋白质TaNAC2的DNA分子。[0053]其中，所述核酸分子可以是DNA，如cDNA、基因组DNA或重组DNA;所述核酸分子也可以是RNA，如mRNA或hnRNA等。[0054]其中，SEQIDNo.3由999个核苷酸组成，SEQIDNo.3自5’末端起第7至993位所示的核苷酸编码SEQIDNo.4所示的氨基酸序列。SEQIDNo.11由984个核苷酸组成，SEQIDNo.11所示的核苷酸编码SEQIDNo.12所示的氨基酸序列。SEQIDNo.13由984个核苷酸组成，SEQIDNo.13所示的核苷酸编码SEQIDNo.14所示的氨基酸序列。[0055]上述方法中，所述“向出发植物中导入编码所述蛋白质TaNAC2的核酸分子”可通过向出发植物中导入重组载体实现；所述重组载体可为向表达载体插入编码所述蛋白质TaNAC2的核酸分子，得到的重组质粒。所述重组载体是将编码所述蛋白质TaNAC2的核酸分子替换改造后的PACH25的⑶S基因序列得到的，具体是将SEQIDNo.3、SEQIDNo.11或SEQIDNo.13所示的DNA分子插入改造后的pACH25的BamHI和KpnI酶切位点间，替换改造后的PACH25的GUS基因序列得到的；所述改造后的pACH25是将Ubiquitin启动子插入pACH25载体的PstI酶切位点间得到的。[0056]上述任一所述的方法中，所述植物可为如下cl至c6中的任一种：cl双子叶植物;c2单子叶植物;c3禾本科植物;c4小麦;c5中国春小麦;c6小麦陇春23。[0057]实验证明，野生型小麦陇春23种子在播种35h后才开始萌发，T3代转TaNAC2基因小麦种子在播种32h后开始萌发;野生型小麦陇春23种子的萌发率为89.4%，0E1种子和0E2种子T3代转TaNAC2基因小麦的种子）的萌发率分别为100%和99%，与野生型小麦陇春23种子相比，分别增加了11.89%和10.77%。由此可见，小麦种子萌发时间提早（即萌发速率提高和萌发率提高的表型与TaNAC2基因的过表达有关，TaNAC2基因在调控小麦种子的萌发速率和萌发率中具有重要作用。因此，可以利用蛋白质TaNAC2调控植物种子萌发。本发明对提高植物种子萌发率和或萌发速率的新材料的选育具有重要应用价值。附图说明[0058]图1为pACH25TaNAC2_A载体示意图。[0059]图2为转基因植株的DNA水平鉴定。[0060]图3为转基因植株的RNA水平鉴定。[0061]图4为转基因植株与野生型植株的种子萌发率。具体实施方式[0062]以下的实施例便于更好地理解本发明，但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的实验材料，如无特殊说明，均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量实验，均设置三次重复实验，结果取平均值。[0063]中国春小麦（TriticumaestivumL.，“ChineseSpring”）在文献“BrenchleyR，SpannaglM,PfeiferM，etal.Analysisofthebreadwheatgenomeusingwhole-genomeshotgunsequencing[J].Nature，2012,4917426:705-710.”中公开过，公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所获得。[0064]KODplusDNA聚合酶为Τ0Υ0Β0公司的产品。[0065]10XPCRbufferforKODplus为Τ0Υ0Β0公司的产品。[0066]pACH25载体在文献“ChristensenAH，QuailPH，1996，Ubiquitinpromoter-basedvectorsforhigh-levelexpressionofselectableandorscreenablemarkergenesinmonocotyledonousplants.TransgenicRes5:213-218，’’中公开过，公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所获得，改造后的PACH25载体是将Ubiquitin启动子插入PACH25载体的PstI酶切位点间得到。[0067]小麦陇春23在文献“袁俊秀，杨文雄，丰产广适优质春小麦新品种-陇春23号，麦类作物学报，2009,294:740”中公开过，公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所获得。[0068]实施例I、转TaNAC2_5A基因小麦的构建[0069]一、转TaNAC2_5A基因植株的制备[0070]一）TaNAC2_5A基因的获得[0071]1、提取中国春小麦的总RNA，反转录得到其cDNA。[0072]2、以步骤1得到的cDNA为模板，以如下引物为引物进行PCR扩增。[0073]上游引物[0074]下划线所示序列为BamHI酶切识别位点）[0075]下游引物：5’-GGTACCGAACGGGGCCGGCATGC-3’（SEQIDNo·2[0076]下划线所示序列为KpnI酶切识别位点）[0077]PCR体系（40yL:模板cDNA4yL，KODplusDNA聚合酶IyL，10XPCRbufferforKODplus4yL，dNTPs2mMeach4yL，25mM的MgS〇42yL，上下游引物各20mM，再用双蒸水将反应体系补足至40yL。[0078]PCR反应程序：98cC2min;98cC30sec，58cC30sec，68cC45sec，35个循环。[0079]PCR扩增产物的核苷酸序列如SEQIDNo.3所示。TaNAC2-5A基因的核苷酸序列如SEQIDNo.3中自5’末端起第7位至第993位核苷酸所示，TaNAC2-5A蛋白的氨基酸序列如SEQIDNo.4所示。[0080]二TaNAC2-5A基因克隆载体的构建[0081]用BamHI和KpnI双酶切SEQIDNo.3所示的DNA分子，得到基因片段;BamHI和KpnI双酶切改造后的PACH25载体，得到载体大片段;将基因片段与载体大片段连接，得到重组质粒，将其命名为pACH25TaNAC2-5A。将重组质粒送测序，结果正确。pACH25TaNAC2-5A中TaNAC2_5A基因由Ubiquitin启动子启动，如图1所示。[0082]三转基因小麦的获得[0083]将pACH25-TaNAC2-5A用基因枪的方法转入小麦陇春23中，得到TO代转TaNAC2-5A基因小麦。提取TO代转TaNAC2-5A基因小麦叶片的基因组DNA，以其作为模板，用pF和pR进行PCR扩增，得到500bp左右的片段，即为阳性TO代转TaNAC2-5A基因小麦。[0084]pF:5’-TTAGCCCTGCCTTCATACGC-3’（SEQIDΝο·5[0085]pR:5’-CAGTCGGTCTTGACCCCCTTA-3’（SEQIDΝο·6[0086]将上述鉴定为阳性的TO代转TaNAC2-5A基因小麦培养至T3代，T1-T3代按照TO代的鉴定方法进行鉴定，筛选T3代转TaNAC2-5A基因纯合系（S卩T2代的种子收获后PCR鉴定下一代植株全部是转TaNAC2-5A基因阳性植株的系认定为纯合系），收获种子，后续实验均采用该T3代转TaNAC2-5A基因纯合系（以下简称T3代转TaNAC2-5A基因小麦株系）。[0087]将载体pACH25利用上述方法转化小麦陇春23,得到转空载体小麦。[0088]二、转基因植株的检测及表型分析[0089]一DNA水平检测[0090]分别提取T3代转TaNAC2-5A基因小麦、转空载体小麦以及野生型小麦陇春23的叶片的DNA，分别以其为模板，以pF和pR为引物进行PCR扩增，同时以水作为空白对照。[0091]PCR反应体系（20yL:腿A模板（约20nguL2:μL[0092]pFClOμΜ0.5μLpR10μΜ0.5μL10XPCR扩增缓冲液2UL[0093]dNTPMixture1μLTaqDNA聚合酶0·2μLddH'fJ13』μL[0094]PCR反应程序：94°：，31^11;941€3〇8,6〇1€3〇8,721€4〇8,40个循环；721€51^11。[0095]TaNAC2-5A基因的目的PCR扩增条带为500bp左右，结果如图2所示。[0096]图2中，LC:野生型小麦陇春23;^1和^2分别是两个了3代转了3嫩02-5六基因小麦株系。[0097]图2表明，野生型小麦陇春23没有目的条带，两个T3代转TaNAC2-5A基因小麦株系OEl和0E2经初步鉴定为阳性转TaNAC2-5A基因小麦。[0098]转空载体小麦的实验结果与野生型小麦陇春23的实验结果一致。[0099]二RNA水平检测[0100]1、分别提取T3代转TaNAC2-5A基因小麦、转空载体小麦以及野生型小麦陇春23的叶片的总RNA，并反转录成cDNA。[0101]2、分别以步骤1得到的cDNA为模板，以TaNAC2RTpF和TaNAC2RTpR为引物进行RT-PCR，扩增TaNAC2-5A基因，同时以TublinpF和TublinpR为引物进行RT-PCR，扩增内参基因Tublin0[0102]引物如下：[0103]TaNAC2RTpF:5’-CTGGGTGCTCTGCCGGCTCTAC-3’（SEQIDΝο·7[0104]TaNAC2RTpR:5,-CTCCGCCTTGGGCTCCATCATC-3,（SEQIDΝο·8[0105]TublinpF:5，-ACCGCCAGCTCTTCCACCCT-3,（SEQIDΝο·9[0106]TublinpR:5，-TCACTGGGGCATAGGAGGAA-3,（SEQIDNo.10[0107]PCR体系：DNA模板（约20ng,wL2μL上游引物（10μΜ0,4μί[0108]下游引物（10μΜ0.4pL2Xmixture10μL[0109]lightCyclerSYBRGreenImaster，购自Roche[0111]PCR程序：94Γ，5min;94ΓIOs，6TC20s，7；TC15s，40个循环。[0112]定量分析：米用RocheLightCycler480IIrealtimePCR仪分析其CT值。以Tublin为内参，以野生型小麦陇春23中的TaNAC2-5A基因的相对表达量为1，T3代转TaNAC2-5A基因小麦和转空载体小麦中的TaNAC2-5A基因用厂^^进行相对定量。[0113]OE1和0E2两个T3代转TaNAC2-5A基因小麦中TaNAC2-5A基因的检测结果如图3所Jn〇[0114]图3中，LC代表野生型小麦陇春23。[0115]图3表明，与野生型小麦陇春23相比，OEl和0E2两个T3代转TaNAC2-5A基因小麦中TaNAC2-5A基因的表达量分别增加了8.13和3.38倍。[0116]转空载体小麦的实验结果与野生型小麦陇春23的实验结果一致。[0117]经过步骤一）的DNA水平检测和步骤二）的RNA水平检测确定OEl和0E2两个T3代转TaNAC2-5A基因小麦构建成功。[0118]实施例2、转TaNAC2_5A基因小麦的表型检测[0119]选取400粒同一批收获的饱满的待测小麦种子0E1种子、0E2种子、转空载体小麦种子或野生型小麦陇春23种子），分为四个生物学重复，每个重复100粒种子，然后进行如下步骤：[0120]1、取待测小麦种子，用30%vv双氧水水溶液消毒5min，去离子水冲洗4-5遍。[0121]2、在方形平板规格为20cmX20cm中铺两层滤纸，加入IOmL饱和硫酸钙溶液浸湿滤纸，然后将完成步骤1的待测小麦种子铺在滤纸上，23°C黑暗条件下放置24h目的为使待测小麦种子充分吸胀催芽）。[0122]3、完成步骤2后，开始观察待测小麦种子的萌发情况，每隔3h统计一次萌发率（以小麦胚根露出种皮为萌发标准进行统计，具体参考文献:Barreroetal.，2009;Lietal.，2017，观察7天结束统计。[0123]以待测小麦种子铺在滤纸上的时间为横坐标，萌发率为纵坐标，绘制萌发曲线。[0124]部分待测小麦种子的萌发曲线见图4WT为野生型小麦陇春23种子，TaOEl为OEl种子，Ta0E2为0E2种子）。结果如下:野生型小麦陇春23种子和转空载体小麦种子在播种35h后才开始萌发，OEl种子和0E2种子在播种32h后开始萌发;野生型小麦陇春23种子的萌发率为89.4%;0E1种子和0E2种子的萌发率分别为100%和99%，与野生型小麦陇春23种子相比，分别增加了11.89%和10.77%;转空载体小麦种子和野生型小麦陇春23种子的萌发率无显著差异。[0125]结果表明，小麦种子萌发时间提早（即萌发速率提高）和萌发率提高的表型与TaNAC2-5A基因的过表达有关，TaNAC2-5A基因在调控小麦种子的萌发速率和萌发率中具有重要作用。[0126]按照上述方法，将TaNAC2_5A基因替换为TaNAC2_5B基因，其它步骤均不变。TaNAC2-5B基因的核苷酸序列如SEQIDNo.11所示，其编码的TaNAC2-5B蛋白的氨基酸序列如SEQIDNo.12所示。结果表明，小麦种子萌发时间提早（即萌发速率提高）和萌发率提高的表型与TaNAC2-5B基因的过表达有关，TaNAC2-5B基因在调控小麦种子的萌发速率和萌发率中具有重要作用。[0127]按照上述方法，将TaNAC2_5A基因替换为TaNAC2_5D基因，其它步骤均不变。TaNAC2-5D基因的核苷酸序列如SEQIDNo.13所示，其编码的TaNAC24D蛋白的氨基酸序列如SEQIDNo.14所示。结果表明，小麦种子萌发时间提早（即萌发速率提高）和萌发率提高的表型与TaNAC2-ro基因的过表达有关，TaNAC2-5D基因在调控小麦种子的萌发速率和萌发率中具有重要作用。[0128]TaNAC2-5A基因、TaNAC2-5B基因和TaNAC24D基因为小麦TaNAC2基因的等位基因，依次位于小麦的A基因组、B基因组和D基因组。

权利要求：1.蛋白质TaNAC2在调控植物种子的萌发速率和或调控植物种子的萌发率中的应用；所述蛋白质TaNAC2自N末端至C末端依次包括元件甲、元件乙、元件丙、元件丁和元件戊；所述元件甲的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第1至185位所示；所述元件乙的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第199至240位所示；所述元件丙的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第243至271位所示；所述元件丁的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第273至314位所示；所述元件戊的氨基酸序列如SEQIDNo.4自N末端起第316至329位所示。2.如权利要求1所述的应用，其特征在于:所述蛋白质TaNAC2为al或a2或a3或a4或a5：al氨基酸序列是SEQIDNo.4所不的蛋白质；a2氨基酸序列是SEQIDNo.12所不的蛋白质；a3氨基酸序列是SEQIDNo.14所不的蛋白质；a4在SEQIDNo.4、SEQIDNo.12或SEQIDNo.14所示的蛋白质的N端或和C端连接标签得到的融合蛋白质；a5将SEQIDNo.4、SEQIDNo.12或SEQIDNo.14所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和或缺失和或添加得到的与植物种子的萌发速率和或植物种子的萌发率相关的蛋白质。3.编码权利要求1或2中所述蛋白质TaNAC2的核酸分子在调控植物种子的萌发速率和或调控植物种子的萌发率中的应用。4.如权利要求3所述的应用，其特征在于：编码权利要求1或2中所述TaNAC2的核酸分子为如下bl或b2或b3或b4或b5或b6所不的DNA分子：bl编码区如SEQIDNo.3自5’末端起第7至993位所示的DNA分子；b2核苷酸序列是SEQIDNo.3所示的DNA分子；b3核苷酸序列是SEQIDNo.11所示的DNA分子；b4核苷酸序列是SEQIDNo.13所示的DNA分子；匕5与131或匕2或匕3或匕4限定的核苷酸序列具有75%或75%以上同一性，来源于小麦且编码权利要求1或2中所述蛋白质TaNAC2的DNA分子；b6在严格条件下与bl或b2或b3或b4限定的核苷酸序列杂交，来源于小麦且编码权利要求1或2中所述蛋白质TaNAC2的DNA分子。5.如权利要求1至4任一所述的应用，其特征在于:所述调控植物种子的萌发速率为提高植物种子的萌发速率或降低植物种子的萌发速率。6.如权利要求1至4任一所述的应用，其特征在于:所述调控植物种子的萌发率为提高植物种子的萌发率或降低植物种子的萌发率。7.如权利要求1至6任一所述的应用，其特征在于:所述植物为如下cl至c6中的任一种:cl双子叶植物;c2单子叶植物;c3禾本科植物;c4小麦。8.培育转基因植物的方法一或培育转基因植物的方法二：所述培育转基因植物的方法一，包括如下步骤：向出发植物中导入提高权利要求1或2中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性的物质，得到转基因植物;与出发植物相比，转基因植物的种子的萌发速率和或种子的萌发率均提高；所述培育转基因植物的方法二，包括如下步骤：向出发植物中导入降低权利要求1或2中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性的物质，得到转基因植物;与出发植物相比，转基因植物的种子的萌发速率和或种子的萌发率均降低。9.植物育种方法一或植物育种方法二：所述植物育种方法一，包括如下步骤:提高植物中权利要求1或2中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性，从而种子的萌发速率和或种子的萌发率均提高；所述植物育种方法二，包括如下步骤：降低植物中权利要求1或2中所述蛋白质TaNAC2表达量和或活性，从而种子的萌发速率和或种子的萌发率均降低。10.如权利要求7至9任一所述的方法，其特征在于:所述植物为如下Cl至C4中的任一种:cl双子叶植物;c2单子叶植物;c3禾本科植物;c4小麦。

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