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申请/专利权人：东北农业大学

摘要：本发明提供一种猪髓源PMAP‑23衍生抗菌肽及制备方法和应用，通过对猪髓源PMAP‑23的肽链截取和氨基酸残基替换而衍生得到的抗菌肽，从而通过截取并替换个别氨基酸的方式获得7条不同的衍生肽；然后使用多肽合成仪，进行固相合成法合成多肽；然后将合成多肽使用高效液相色谱进行纯化，并利用电喷射质谱法进行鉴定；最后，通过最小抑菌浓度和溶血试验测定衍生抗菌肽的抑菌活性和细胞毒性，筛选具有较理想活性的多肽，抗菌肽RII‑2，其序列如序列表SEQNo.2所示。该抗菌肽衍生于猪髓源PMAP‑23，属于天然衍生物，安全性较好，具有广谱抗菌活性和低毒性；制备方法和技术成熟，合成成本低。

主权项：1.一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RII-2，其特征在于：其序列如序列表SEQIDNo.2所示。

全文数据：猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽及制备方法和应用技术领域本发明属于生物技术领域，具体涉及一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽及制备方法和应用。背景技术抗生素可预防和治疗感染性疾病，但抗生素非特异性极易引起内源性感染或二重感染；使细菌产生耐药性，致“超级细菌”出现；畜产品残留给人类健康和环境保护带来风险。欧盟等国家和地区已全面禁止动物性产品中使用抗生素。抗菌肽作为抗生素的重要替代物普遍存在于生命机体防御系统并广泛参与非特异性免疫，是大多数生物体感染初始阶段主要防护机制。抗菌肽一般都具有疏水性和正净电荷的特点，残基长度也从十以下到几十不等。某些天然抗菌肽存在抑菌活性偏弱、细胞毒性较强、长度略长等限制其应用和制备的问题，具体以猪髓源抗菌肽PMAP-23来说，其氨基酸残基个数为23个，最小抑菌浓度能达到2-8μM，其最小溶血活性为128μM。若能在保持杀菌活性的前提下，进一步降低溶血活性和缩短肽链长度，则可以提高该肽的安全性和降低合成成本。发明内容基于以上不足之处，本发明的目的在于提供一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽，该抗菌肽衍生于猪髓源PMAP-23，属于天然衍生物，安全性较好，具有广谱抗菌活性和低毒性。本发明的目的通过下述技术方案实现：一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RII-2，其序列如序列表SEQIDNo.2所示。本发明的另一目的在于还提供一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RII-2的制备方法，该制备方法和技术成熟，合成成本低，方法具体步骤如下：1根据猪髓源抗菌肽PMAP-23的疏水性氨基酸和电荷分布特点，通过截取N末端11位残基和C末端8位残基，并替换个别氨基酸，从而获得长度为11的3条衍生肽RII-1、RII-2、RWW和长度为8的4条截取衍生肽KFV-1、KFV-2、KFV-3、KFV-4，它们的序列分别如序列表SEQIDNo.1-7所示；2采用固相化学合成法，通过多肽合成仪合成多肽；3将合成的多肽使用反相高效液相色谱进行纯化，并利用电喷射质谱法对合成的多肽进行鉴定，完成多肽的制备；4通过最小抑菌浓度和溶血试验测定衍生抗菌肽的抑菌活性和细胞毒性，发现筛选的RII-2衍生肽的最小抑菌浓度平均值为3.56μM，强于其他衍生肽的抑菌活性；而对于细胞毒性，在256μM浓度未发现溶血性，综合抑菌活性和溶血活性，衍生抗菌肽RII-2的治疗指数最大为143.82，从而选取衍生抗菌肽RII-2，其序列如序列表SEQIDNo.2所示。本发明的另一目的在于还提供一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RII-2在治疗革兰氏阳性菌或和革兰氏阴性菌感染性疾病药物中的应用。本发明的优点及有益效果：本发明通过猪髓源PMAP-23进行C端或N端截取其活性中心，并通过适当的残基替代，从而在保证抑菌活性的情况下，减弱衍生肽的细胞毒性，并降低肽的长度，为提高安全性和降低合成成本提供支撑。该抗菌肽衍生于猪髓源PMAP-23，属于天然衍生物，安全性较好，具有广谱抗菌活性和低毒性，综合抑菌活性和溶血活性，衍生抗菌肽RII-2的治疗指数最大为143.82；该抗菌肽由11个氨基酸组成，肽链较短，制备方法和技术成熟，合成成本低。附图说明图1为抗菌肽RII-1的质谱图。图2为抗菌肽RII-2的质谱图。图3为抗菌肽RWW的质谱图。图4为抗菌肽KFV-1的质谱图。图5为抗菌肽KFV-2的质谱图。图6为抗菌肽KFV-3的质谱图。图7为抗菌肽KFV-4的质谱图。具体实施方式下面结合实施例及附图对本发明作进一步详细的描述，但本发明的实施方式不限于此。实施例1：猪髓源抗菌肽PMAP-23衍生抗菌肽的设计通过NCBI获取猪髓源抗菌肽PMAP-23的氨基酸全序列，然后截取C末端11位和N末端8位氨基酸残基序列，并替换个别氨基酸，从而获得长度为11的3条截取衍生肽和长度为8的4条截取衍生肽。如表1所示。表1猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽的氨基酸序列和分子量实施例2：猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽的合成将表1所示七条多肽使用多肽合成仪合成，选用固相有机合成，采用Fmoc保护合成法，合成方向从C端到N端逐一进行，具体步骤如下：1选取已经和C端第一个氨基酸连接的Wang树脂，即Fmoc-Atrt-Wang9-芴甲氧羧基-三甲基-A，其中A为C端第一个氨基酸，使用二甲基甲酰胺DMF浸泡15min左右以除去杂质；用含有20％哌啶的DMF脱除树脂上的Fmoc保护，反应20min，洗涤树脂直至完全。用DMF清洗掉哌啶，剩余的固体悬浮物即是脱保护的A-Wang。用印三酮检测剂检查A-Wang脱保护的质量。2将Fmoc-Btrt-OH9-芴甲氧羧基-三甲基-B，B为每个抗菌肽C端第二个氨基酸与上述得到的脱保护的Wang树脂进行缩合反应；然后再脱去Fmoc基团。按照这个程序依次从C端到N端逐个延伸，直至将整个肽链合成完毕，当最后一个氨基酸脱保护后，用DMF洗涤8次，再用乙醇和二氯甲烷DCM交叉洗涤8次。将三氟乙酸TFA：三异丙基氯硅烷TIS：水＝95：2.5：2.5体积比进行混合，配制成为切割试剂与上述得到的多肽20℃下反应2h，把多肽从树脂上切割下来。旋转蒸发仪蒸发TFA，再加入10倍左右体积的预冷无水乙醚沉淀多肽3h，析出白色粉末状固体。真空干燥，得到粗品多肽。3将上述粗品多肽使用90％乙腈水溶液溶解，使用制备色谱柱进行纯化，分析型色谱柱检测纯度。半制备型高效液相色谱仪为WatersDeltaPrep4000，制备色谱柱为WatersX-BridgeC18、5μm反相柱。洗脱液A为含有0.1％TFA的水溶液，B为含有0.1％TFA的乙腈水溶液；检测波长220nm，洗脱方式为30％B～65％B的线性浓度梯度洗脱，流速为30mLmin。收集纯度高于95％的馏分，并冷冻干燥。分析型高效液相色谱仪为Agilent1100，分析型色谱柱为SepaxGP-C18反相柱4.6mm×150mm,5μm，洗脱液A液为0.1％TFA的水溶液，B液为含0.1％TFA的乙腈水溶液；检测波长220nm。洗脱方式为50％B～75％B的线性浓度梯度洗脱，流速为1.0mLmin。4多肽的质谱鉴定：将上述得到的多肽经过电喷射质谱法分析，质谱图中显示的分子量与理论分子量一致。如附图1-7所示。使用高效液相色谱进行纯化，使得抗菌肽的纯度大于95％。实施例3：猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽的抑菌活性测定采用美国临床实验室标准化研究所CLSI推荐的测定最小抑菌浓度MIC的方法，同时针对抗菌肽的阳离子性的特征，以0.01％乙酸含0.2％BSA作为多肽稀释液，使用二倍稀释法依次配置系列梯度的抗菌肽溶液。具体步骤如下：1菌体的准备：取冻存于-20℃的待测菌，划线接种于MHA培养基中孵育。挑取单菌落，接种于10mLMHB培养基中，37℃、200rpm过夜培养。然后再将过夜菌体接种于新鲜的培养基中，培养1～2h，直至菌体处于对数生长期，使其OD600＝0.4，用MHB将所得菌液的菌落数调整为大约105CFUmL左右；2肽的准备：将多肽的浓度调整为256μM，吸取100μL加入到96孔板的第1列孔内，其它孔中加入50μLMH肉汤培养基，然后将第1号孔中的多肽溶液吸出50μL，加入第2号孔内，依次类推倍比稀释至第10号孔，吸出50μL弃去；3接种菌：用加样枪取上述调整好的50μL菌液依次加到96孔板的前11列孔中，最终接种细菌浓度为每孔5×104CFUmL。将96孔板置微型振荡器上振荡1min，使各孔内液体混匀，微孔板加盖以减少孵育过程中的蒸发，并于37℃下孵育20～24h。其中设定阳性对照组为第11孔：即只加50μLMH肉汤培养基和50μL菌液；阴性对照为第12孔无菌对照组：即只加100μLMH肉汤培养基。这时从第1孔到第10孔抗菌肽的浓度将依次递减；4结果判断：无菌对照孔在整个试验过程中应始终保持清亮，表明整个试验是无菌操作。与生长对照孔中细菌生长特性如微孔内肉汤呈混浊状、孔底出现沉淀等相比较进行判断，无肉眼可见生长的最低药物浓度为测定药物对检测菌的MIC值。通过表2的结果可以看出，猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽对细菌的最小抑菌浓度从2μM到大于128μM不等，其中RII-2的最小抑菌浓度值最小，为2μM～4μM之间，GM值达到3.56μM，远大于RII-1、KFV-1、KFV-2、KFV-3等多肽的MIC值。表2猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽的抑菌活性备注：“--”代表在最大测定浓度128μM时，没有发现抑菌活性。GM：代表最小抑菌浓度的几何平均数。实施例4：猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽的溶血活性和治疗指数对于肽溶血活性的测定，具体试验步骤如下：1使用肝素钠抗凝管采集新鲜的人血液1mL，4℃保存备用；2将上述的血液1000×g离心5min，弃除上清，收集红细胞；3将收集到的红细胞用PBS缓冲溶液洗涤三遍，在1000×g条件下离心5min，弃上清，收集红细胞，最后用约10mL左右的PBS缓冲溶液重悬细胞；4多肽的稀释：向排列好的每排12个EP管的第1号管内加入90μLPBS缓冲溶液，其余管中都加入50μLPBS缓冲溶液，再向第1号管内加入10μL待测肽母液，然后将第1号管中的多肽溶液混匀吸出50μL，加到第2号管内，依次倍比稀释至第10号后，吸出50μL弃去；5取50μL上述准备好的红细胞悬液分别加入到含有不同浓度抗菌肽溶液的EP管中，在37℃培养箱内恒温孵育1h。其中，第11孔加50μLPBS和50μL红细胞悬液作为阴性对照，第12孔加50μL0.1％TritonX-100和50μL红细胞悬液作为阳性对照；61h后取出EP管，在4℃条件下1000×g离心5min；7吸取上述离心溶液的上清，平行转移到一个洁净的96孔板对应的孔中，用酶标仪在570nmOD570nm处测定光吸收值。从表3的结果可以看出，猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RWW在128μM时具有5％溶血活性，其他衍生肽在256μM时没有发现溶血活性。通过治疗指数判断，即：最小溶血浓度MHC与最小抑菌浓度几何平均数GM的比值，可以看出RII-2的治疗指数达到143.82，远高于其他衍生肽，因此RII-2具有最优的杀灭细菌同时兼顾较弱的溶血毒性，具有较理想的应用前景。表3猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽的溶血活性和治疗指数备注：“--”代表在最大测定浓度256μM时，没有发现对红细胞的溶血活性。序列表东北农业大学猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽及制备方法和应用7SIPOSequenceListing1.0111PRT人工序列ArtificialSequence1ArgIleIleAspLeuLeuTrpArgValArgArg1510211PRT人工序列ArtificialSequence2ArgIleIleArgLeuLeuTrpArgValArgArg1510311PRT人工序列ArtificialSequence3ArgTrpTrpArgLeuLeuTrpArgValArgArg151048PRT人工序列ArtificialSequence4LysPheValThrValTrpValArg1558PRT人工序列ArtificialSequence5LysPheValArgValTrpValArg1568PRT人工序列ArtificialSequence6LysPheValArgArgTrpValArg1578PRT人工序列ArtificialSequence7LysPheValTrpValTrpValArg15

权利要求：1.一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RII-2，其特征在于：其序列如序列表SEQIDNo.2所示。2.根据权利要求1所述的一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RII-2的制备方法，其特征在于，方法步骤如下：1根据猪髓源抗菌肽PMAP-23的疏水性氨基酸和电荷分布特点，通过截取N末端11位残基和C末端8位残基，并替换个别氨基酸，从而获得长度为11的3条衍生肽RII-1、RII-2、RWW和长度为8的4条截取衍生肽KFV-1、KFV-2、KFV-3、KFV-4，它们的序列分别如序列表SEQIDNo.1-7所示；2采用固相化学合成法，通过多肽合成仪合成多肽；3将合成的多肽使用反相高效液相色谱进行纯化，并利用电喷射质谱法对合成的多肽进行鉴定，完成多肽的制备；4通过最小抑菌浓度和溶血试验测定衍生抗菌肽的抑菌活性和细胞毒性，发现筛选的RII-2衍生肽的最小抑菌浓度平均值为3.56μM，强于其他衍生肽的抑菌活性；而对于细胞毒性，在256μM浓度未发现溶血性，综合抑菌活性和溶血活性，衍生抗菌肽RII-2的治疗指数最大为143.82，从而选取衍生抗菌肽RII-2，其序列如序列表SEQIDNo.2所示。3.根据权利要求1所述的一种猪髓源PMAP-23衍生抗菌肽RII-2在治疗革兰氏阳性菌或和革兰氏阴性菌感染性疾病药物中的应用。

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