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一种小茴紫朵丽蝶的组织培养快速繁殖方法 

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摘要:本发明提供了一种小茴紫朵丽蝶的组织培养快速繁殖方法,包括外植体的制备与消毒→启动培养→不定芽诱导培养→不定芽的增殖培养→生根培养→组培苗移栽。本发明首次采用组织培养的方法对小茴紫朵丽蝶进行繁殖,该方法繁殖更快,可达到规模化生产的要求,保证了种苗的品质和质量,为小茴紫朵丽蝶繁殖提供了新的有效途径。本发明在诱导培养步骤中通过诱导原球体,用原球体进行增殖长出多芽体,增殖系数2.0‑3.0,与一般分株繁殖方法相比,大大提高了繁体系数。本发明在不定芽诱导培养、不定芽的增殖培养步骤中,培养环境为温度25‑28℃,光照时长8‑11小时,光照强度2000‑3000lux。

主权项:1.一种小茴紫朵丽蝶的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,包括以下步骤:(1)外植体的制备与消毒:挑选生长健壮、无病虫害长势良好的3.5寸小茴紫朵丽蝶苗,待抽花梗并生长至13cm时取做外植体,用75%酒精擦拭花梗,将花梗切成3cm带节芽的节段,把节芽苞片切除备用;1wt%的双氧水中加2滴吐温,置于摇床上振荡2个小时后,用无菌水洗涤2次,用75%酒精漂洗1分钟,无菌水漂洗2次,将芽段按大中小分组进行消毒;用0.2wt%二氧化氯水溶液在摇床上进行消毒灭菌,大、中、小芽段的二氧化氯水溶液消毒时间分别为25min、17min、12min,节段消毒灭菌结束后用无菌水漂洗3遍待转入培养基;(2)启动培养:取步骤1中消毒好的节段,切去两端0.5cm,将节芽朝上插入启动培养基中进行培养,培养环境温度28℃,光照时长9小时,光照强度2500lux;培养70天,节芽生长成有3片叶片的小苗后转接到增殖培养基;(3)诱导培养:从步骤2中培养的花梗上切离小苗,将小苗的茎段横切成0.5cm的片段,平放在诱导培养基上,培养环境温度27℃,光照时长9小时,光照强度2500lux,培养55天,在茎段切片上可长出原球体;(4)增殖培养:从步骤3中的组织片段上切离原球体,接种到增殖培养基上进行增殖扩繁,培养环境温度27℃,光照时长9小时,光照强度2500lux,培养55天,可获得多量的原球体或从原球体上获得多量的不定芽;(5)壮苗生根培养:从步骤4获得的不定芽组织上切离小苗,接种到壮苗生根培养基上,培养环境温度28℃,光照时长11小时,光照强度3500lux,培养55天,小苗生长到3片叶,再次接种到壮苗生根培养基,培养环境温度27℃,光照时长11小时,光照强度3500lux,培养55天,小苗生长到4片叶,长出2cm的根后可出瓶定植;(6)组培苗移栽:将步骤4中的小苗从培养瓶中取出,用干净的水将培养基洗掉,转移至水帘大棚,用5.5cm透明软杯种植,用40cm60cm45孔穴盆固定摆放;栽培后将小苗叶片按穴盆对角线平行摆放;定植7天后淋一次4000倍克土菌,种植环境湿度85%,温度27℃,种植的基质为水草;等长出根系后,开始淋肥水;启动培养基的组分为:NH4NO3550mgL、KNO3633.3mgL、MgSO4·7H2O123.3mgL、KH2PO456.6mgL、CaCl2·2H2O146.6mgL、KI0.83mgL、H3BO36.2mgL、MnSO4·4H2O22.3mgL、ZnSO4·7H2O8.6mgL、Na2MoO2·2H2O0.25mgL、CuSO4·5H2O0.025mgL、CoCl2·6H2O0.025mgL、FeSO4·7H2O27.8mgL、Na2·EDTA37.3mgL、盐酸硫胺素0.1mgL、烟酸0.5mgL、盐酸吡哆醇0.5mgL、甘氨酸2mgL、肌醇100mgL、椰子水200mlL、白糖17gL、琼脂6.2gL、6-苄氨基嘌呤4mgL和萘乙酸0.4mgL,培养基灭菌前pH调节至5.1;诱导培养基的组分为:NH4NO3550mgL、KNO3633.3mgL、MgSO4·7H2O123.3mgL、KH2PO456.6mgL、CaCl2·2H2O146.6mgL、KI0.83mgL、H3BO36.2mgL、MnSO4·4H2O22.3mgL、ZnSO4·7H2O8.6mgL、Na2MoO2·2H2O0.25mgL、CuSO4·5H2O0.025mgL、CoCl2·6H2O0.025mgL、FeSO4·7H2O27.8mgL、Na2·EDTA37.3mgL、盐酸硫胺素0.1mgL、烟酸0.5mgL、盐酸吡哆醇0.5mgL、甘氨酸2mgL、肌醇100mgL、椰子水200mlL、白糖17gL、琼脂6.2gL、6-氨基嘌呤10mgL、6-苄氨基嘌呤10mgL和萘乙酸1mgL,培养基灭菌前pH调节至5.1;增殖培养基的组分为:NH4NO3550mgL、KNO3633.3mgL、MgSO4·7H2O123.3mgL、KH2PO456.6mgL、CaCl2·2H2O146.6mgL、KI0.83mgL、H3BO36.2mgL、MnSO4·4H2O22.3mgL、ZnSO4·7H2O8.6mgL、Na2MoO2·2H2O0.25mgL、CuSO4·5H2O0.025mgL、CoCl2·6H2O0.025mgL、FeSO4·7H2O27.8mgL、Na2·EDTA37.3mgL、盐酸硫胺素0.1mgL、烟酸0.5mgL、盐酸吡哆醇0.5mgL、甘氨酸2mgL、肌醇100mgL、椰子水200mlL、白糖17gL、琼脂6.2gL、6-氨基嘌呤10mgL、6-苄氨基嘌呤10mgL和萘乙酸1mgL,培养基灭菌前pH调节至5.1;生根培养基的组分为:花宝1号1.5gL、硝酸钙100mgL、甘氨酸1mgL、肌醇50mgL、香蕉泥40gL、土豆泥40gL、白糖25gL、活性炭1gL、紫罗兰茎叶匀浆5gL、无花果提取物9mgL、琼脂6.5gL,培养基灭菌前pH调节至5.1;所述紫罗兰茎叶匀浆的制备方法为:(1)将紫罗兰茎叶洗净后放置在平面容器内,在平面容器内铺设一层塑料薄膜,在塑料薄膜上铺设一层紫罗兰茎叶,间距在2cm,然后将所述平面容器放入-50℃的急冻冷库中急冻;(2)将急冻后的紫罗兰茎叶取出放入超微粉碎机进行粉碎;(3)将粉碎后的紫罗兰茎叶取出,加入其3倍质量的蒸馏水混合,得到紫罗兰茎叶匀浆;急冻时间为50min;所述无花果提取物的制备方法,包括以下步骤:(1)将无花果干燥后粉碎至80目,得到无花果粉体,将质量比1:5的无花果粉体和水混合后进行超声,得到超声处理液;(2)将所述超声处理液温度75℃浸提2h,取上清液;进行浓缩处理,得到浸膏;(3)将所述浸膏使用乙醇进行醇沉后进行离心,得到无花果提取物;超声时间为40min;所述步骤(5)中种植的基质为:进口智利水草。

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