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申请/专利权人：四川农业大学

摘要：本发明提供了一种水稻粒型相关蛋白GLW2及其编码基因与应用，该GLW2蛋白具有如SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列，或为SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列经过一个或多个氨基酸残基的取代、缺失或添加而形成的具有同等功能的氨基酸序列；该编码基因具有如SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列，或在严格条件下与SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列杂交的核苷酸序列。本发明GLW2编码基因重组在表达载体并转化水稻后，过表达GLW2能够增加水稻籽粒粒长、粒宽，提高水稻产量。

主权项：1.一种水稻粒型相关蛋白GLW2，其特征在于，其氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。

全文数据：一种水稻粒型相关蛋白GLW2及其编码基因与应用技术领域本发明属于植物基因工程和植物育种，尤其涉及一种水稻粒型相关蛋白GLW2及其编码基因与应用。背景技术水稻作为重要的粮食作物，在我国的粮食安全保障中具有重要的作用，不断提高稻谷单位面积产量是关系国计民生的大事。粒型对胚乳结构、米粒外观、千粒重、结实率、穗粒数等性状均有巨大的影响，不仅是水稻品质的重要指标，同时也是产量增加的关键因素。伴随基因定位群体的不断发展，以及新型分子标记的进一步开发，陆续有更多的水稻关键性状基因被定位以及克隆。关于这些新基因的研究大大的加强了人们对水稻籽粒性状遗传特性和分子机理的认知，同时这些基因的合理利用指导并促进了水稻单产的增加和品质的提高。至今，GrameneQTLhttp:www.gramene.orgQTL数据库已收录栽培稻QTL8646个，其中产量相关性状QTL2064个，粒型相关QTL219个，包含控制粒长位点26个，控制粒宽、粒厚、长宽比位点分别31、3、9个，控制粒重位点22个。粒重性状QTL较少可能由于粒重基因与环境互作较强，遗传特性相对复杂，及性状鉴定相对困难造成的。粒型相关QTL主要分布在第1、第2、第3及第5染色体上。在不同定位结果中，不同性状的QTL汇集可能在同一染色体区段，这可能代表了基因连锁或一因多效的情况，解释了群体中粒型多个性状同步出现的现象。另一方面，同一性状的QTL也可能定位到不同染色体上，这则从染色体水平上解释了粒型数量性状的来源。近年来，在全世界特别是中国科学家的积极努力下，水稻粒型和产量性状相关基因的克隆取得了长足的进展，但是由于数量性状QTL克隆的复杂性，导致了现在已克隆的水稻粒型和产量性状相关基因还很少，水稻中调控粒型的机理任然不清楚，不完善。因此，水稻籽粒粒型相关基因GLW2的克隆和功能研究，对于明确水稻中调控籽粒粒型的分子机制和其在杂交育种中的应用具有重要的意义。。发明内容本发明的首要目的在于提供一种水稻粒型相关蛋白GLW2。本发明的再一目的在于提供上述水稻粒型相关蛋白GLW2的编码基因。本发明的另一目的在于提供上述水稻粒型相关蛋白GLW2或编码基因在控制水稻籽粒粒型长、宽、提高水稻粒重及产量方面的应用。本发明是这样实现的，应用图位克隆技术从水稻材料307R中获得一籽粒粒型相关的基因，该基因的突变导致水稻籽粒粒长、粒宽显著增加，从而导致籽粒粒重增加，命名为2号染色体籽粒长宽基因GLW2。由此，本发明提供了一种水稻粒型相关蛋白GLW2，具有如SEQIDNO.2所示的氨基酸序列。此外，本发明还包括多肽，可以是重组多肽、天然多肽、合成多肽，优选的是重组多肽。本发明的多肽可以是天然纯化的产物，或是化学合成的产物，或是使用重组技术从原核或真核宿主例如，细菌、酵母、高等植物、昆虫和哺乳动物细胞中产生。根据重组生产方案所用的宿主，本发明的多肽可以是糖基化的，或可以是非糖基化的。本发明的多肽还可包括或不包括起始的甲硫氨酸残基。本发明还包括GLW2蛋白的片段、衍生物和类似物。本文中，术语“片段”、“衍生物”和“类似物”是指基本上保持本发明的GLW2蛋白相同的生物学功能或活性的多肽。本发明的多肽片段、衍生物或类似物可以是1有一个或多个保守或非保守性氨基酸残基优选保守型氨基酸残基被取代的多肽，而这样的取代的氨基酸残基可以是也可以不是由遗传密码编码的，或2在一个或多个氨基酸残基中具有取代基团的多肽，或3成熟多肽与另一个化合物比如延长多肽半衰期的化合物，例如聚乙二醇融合所形成的多肽，或4附加的氨基酸序列融合到此多肽序列而形成的多肽如前导序列或分泌序列或用来纯化此多肽的序列或蛋白序列，或融合蛋白。根据本文的定义，这些片段、衍生物和类似物属于本领域技术人员公知的范围。在本发明中，GLW2蛋白指具有SEQIDNO.2序列的多肽。本发明还包括与SEQIDNO.2序列的蛋白相同功能的、SEQIDNO.2序列的变异形式。这些变异形式包括但并不限于：若干个通常为1～50个，较佳地1～30个，更佳地1～20个，最佳地1～10个或更少1～8个或1～5个氨基酸的缺失、插入和或取代，以及在C末端和或N末端添加一个或数个通常为20个以内，较佳地为10个以内，更佳地为5个以内氨基酸。例如，在本领域内，用性能相似的氨基酸进行取代时，通常不会改变蛋白质的功能。又比如，在C末端和或N末端添加一个或数个统称也不会改变蛋白质的功能。还包括GLW2蛋白的活性片段和活性衍生物。多肽的变异形式包括：同源序列、保守性变异体、等位变异体、天然突变体、诱导突变体、在高或低的严谨度条件下能与GLW2蛋白编码DNA杂交的DNA所编码的蛋白、以及利用GLW2蛋白的抗血清获得的多肽或蛋白。所述的同源序列是指具有与SEQIDNO.2序列有至少50％，较佳地至少60％，70％，80％，更佳地至少85％，90％，95％相同性的多肽。本发明还提供了其他的多肽，如包含GLW2蛋白或其片段的融合蛋白。除了几乎全长的多肽外，本发明还包括了GLW2蛋白的可溶性片段。通常，该片段具有GLW2蛋白的至少约20个连续的氨基酸，通常至少约30个连续氨基酸，较佳地至少约50个连续氨基酸，更佳地至少约100个连续的氨基酸，最佳地至少约150个连续氨基酸。本发明还提供GLW2蛋白或多肽的类似物。这些类似物与天然的GLW2蛋白的差异可以是氨基酸序列上的差异，也可以是不影响序列的修饰形式上的差异，或者兼而有之。这些多肽包括天然或诱导的遗传变异体。诱导变异体可以通过各种技术得到，如通过辐射或暴露于诱变剂而产生的随机诱变，还可以通过定点诱变法或其他的已知的分子生物学的技术。类似物还包括具有不同于天然L-氨基酸残基如D-氨基酸的类似物，以及具有非天然存在的或合成的氨基酸如β-氨基酸的类似物。应理解，本发明的多肽并不限于上述例举的代表性多肽。修饰通常不改变一级结构形式包括：体内或体外的多肽的化学衍生形式如乙酰化或羧基化。修饰还包括糖基化。修饰形式还包括具有磷酸化氨基酸残基如磷酸酪氨酸，磷酸丝氨酸，磷酸苏氨酸的序列。还包括被修饰从而提高了其抗蛋白水解性能或优化了溶解性能的多肽。在本发明中还包括GLW2蛋白保守性变异蛋白多肽，与SEQIDNO.2的氨基酸序列相比，有至多20个，较佳地至多10个，更佳地至多5个，最佳地至多3个氨基酸被性质相似或相近的氨基酸所替代而形成的多肽，且保留与SEQIDNO.2序列的蛋白相同的功能。进一步的，本发明提供了上述水稻粒型相关蛋白GLW2的编码基因，该编码基因为具有如SEQIDNO.1所示的核苷酸序列；或，在严格条件下与SEQIDNO.1所示的核苷酸序列杂交的核苷酸序列。即，本发明还提供了编码本发明GLW2蛋白或其保守性变异多肽的多核苷酸序列。本发明的多聚核苷酸基因可以是DNA形式或RNA形式。DNA形式包括cDNA、基因组DNA或人工合成的DNA。DNA可以是单链或是双链的。DNA可以是编码链或非编码链。编码成熟多肽的编码区序列可以与SEQIDNO.2所示的编码区序列相同或者是简并的变异体。如本文所用，“简并的变异体”在本发明中是指编码具有SEQIDNO.2的蛋白质，但与SEQIDNO.2所示的编码区序列有差别的核苷酸序列。编码SEQIDNO.2的成熟多肽的多核苷酸包括：只编码成熟多肽的编码序列；成熟多肽的编码序列和各种附加编码序列；成熟多肽的编码序列和任选的附加编码序列以及非编码序列。本发明还涉及上述多核苷酸的变异体，其编码与本发明有相同的氨基酸序列的多肽或多肽的片段、类似物和衍生物。此多核苷酸的变异体可以是天然发生的等位变异体或非天然发生的变异体。这些核苷酸变异体包括取代变异体、缺失变异体和插入变异体。如本领域所知的，等位变异体是一个多核苷酸的替换形式，他可能是一个或多个核苷酸的取代、缺失或插入，但不会从实质上改变其编码的多肽的功能。本发明还涉及与上述的序列杂交且两个序列之间具有至少50％，较佳地至少70％，进一步较佳地至少80％，更佳地至少90％相同性的多核苷酸。本发明特别涉及在严格条件下与本发明所述多核苷酸可杂交的多核苷酸。在本发明中，“严格条件”是指：1在较低的离子强度和较高温度下的杂交和洗脱，如0.2×SSC，0.1％SDS，60℃；或2杂交时加有变性剂，如50％VV甲酰胺，0.1％小牛血清0.1Ficoll，42℃等；或3仅在两条序列之间的相同性至少在70％以上，较佳地至少80％以上，更佳地90％以上，更好是95％以上时才发生杂交。并且，可杂交的多核苷酸编码的多肽与SEQIDNO.2所示的成熟多肽有相同的生物学功能和活性。本发明还涉及与上述的序列杂交的核酸片段。如本文所用，“核酸片段”的长度至少含有15个核苷酸，较好是至少30个核苷酸，更好地是至少50个核苷酸，最好是至少100个核苷酸以上。核算片段可用于核算的扩增技术如PCR以确定和或分离编码GLW2蛋白的多聚核苷酸。本发明的GLW2蛋白核苷酸全长序列或其片段通常可以用PCR扩增法、重组法或人工合成的方法获得。对于PCR扩增法，可根据本发明公开的有关核苷酸序列，尤其是开放阅读框来设计引物，并用市售的cDNA库或按本领域技术人员已知的常规方法所制备的cDNA库作为模板，扩增而得到有关的序列。当序列较长时，常常需要进行两次或多次PCR扩增，然后再将各次扩增出的片段按正确的次序拼接在一起。一旦获得了有关的序列，就可以用重组法来大批量地获得有关序列。这通常是将其克隆入载体，再转入细胞，然后通过常规方法从增值和的宿主细胞中分离得到有关序列。此外，还可以利用人工合成的方法来合成有关序列，尤其是片段长度较短时。通常，先合成多个小片段，然后在进行连接可获得序列很长的片段。目前，已经可以完全通过化学合成来得到编码本发明蛋白或其片段，或其衍生物的DNA序列。然后可将该DNA序列引入本领域中已知的各种现有的DNA分子或如载体和细胞中。此外，还可同过化学合成将突变引入本发明蛋白序列中。进一步的，本发明还提供了含有上述水稻粒型相关蛋白GLW2的编码基因的表达载体，以及用本发明的载体或GLW2蛋白编码序列经基因工程产生宿主细胞，以及经重组技术产生本发明所述多肽的方法。通过常规的DNA重组技术，可利用本发明的多聚核苷酸序列来表达或生产重组的GLW2蛋白。一般说来有以下步骤：用本发明得的编码GLW2蛋白的多核苷酸或变异体，或用该多核苷酸的重组表达载体转化或转导合适的宿主细胞；在合适的培养基中培养宿主细胞；从培养基或细胞中分离、纯化蛋白质。在本发明中，GLW2蛋白多核苷酸序列可插入到重组表达载体中。术语“重组表达载体”指本领域熟知的细菌质粒、噬菌体、酵母质粒、植物细胞病毒、哺乳动物细胞病毒或其他载体。总之，只要能在宿主体内复制和稳定，任何质粒和载体都可以使用。表达载体的一个重要特征是通常含有复制起点、启动子、标记基因和翻译控制元件。本领域的技术人员熟知的方法能用于构建含GLW2蛋白编码DNA序列和合适的转录、翻译控制信号的表达载体。这些方法包括体外重组DNA技术、DNA合成技术、体内重组技术等。所述的DNA序列可有效连接到表达载体中适当的启动子上，以指导mRNA的合成。表达载体还包括翻译起始用的核糖体结合位点和转录终止子。此外，表达载体优选地包含一个或多个选择性标记基因，以提供用于选择转化的宿主细胞的表型性状，如真核细胞培养用二氢叶酸还原酶、新霉素抗性及绿色荧光蛋白GFP，或用于大肠杆菌的卡那霉素或氨苄青霉素抗性。包含上述的适当的DNA序列以及适当启动子或者控制序列载体，可以用于转化适当的宿主细胞，以使其能够表达蛋白质。宿主细胞可以是原核细胞，如细菌细胞；或是低等真核细胞，如酵母细胞；或是高等真核细胞，如植物细胞。代表性的例子有：大肠杆菌，链霉菌属，农杆菌；真核细胞如酵母；植物细胞等。进一步的，本发明还提供了上述水稻粒型相关蛋白GLW2及其编码基因的用途，具体包括：GLW2基因图位克隆，如图1所示，通过IR24为背景的GLW2近等基因系群体将GLW2精确定位到水稻2号染色体长臂末端15.3K范围内，再通过对该区域的测序比对发现，其中一个基因存在真实碱基突变TC-AA，将该基因命名为GLW2；控制水稻籽粒粒长、粒宽；提高水稻产量的方法。本发明可通过调节所述植物中GLW2基因的表达或活性，调节水稻的籽粒粒长、粒宽，从而增加籽粒粒重。促进还是抑制GLW2的表达活性主要取决于水稻所需改良的性状而定。当需要增加水稻的籽粒粒重时，可以通过提高所述水稻中GLW2基因的表达或活性来实现；当需要降低水稻的籽粒粒重，可以通过降低所述植物中GLW2基因的表达或活性来实现。本发明将近等基因系NIL-GS2527R、NIL-GS2MH63及对应亲本527R、MH63分别与不育系640A、106A进行杂交，通过杂种F1代640AMH63、640ANIL-GS2MH63、106AMH63、106ANIL-GS2MH63、640A527R、640ANIL-GS2527R产量性状调查对GS2产量潜力进行评估，如下表1和表2所示。所有近等基因系组配后代株系的籽粒粒长、粒宽、千粒重和穗长极显著增加；其穗粒数和分蘖数无明显变化；640ANIL-GS2MH63和106ANIL-GS2MH63的组配后代中，株高有极显著的增加，而640ANIL-GS2527R组配后代株高无明显变化，我们推测造成株高变化是亲本配合力等因素造成的，并不受到GS2的影响；所有近等基因系组配后代株系单株产量和每平方米产量显著增加，其中在每平方米产量上，106ANIL-GS2MH63的组配后代增产13.74％，640ANIL-GS2527R组配后代增产17.85％，640ANIL-GS2MH63组配后代增产28.00％。通过产量性状调查分析我们可以发现，在不同亲本杂交后代中GS2的增产潜力不同，其增产幅度在13.74％-28.00％之间。由此可以预见，在合理选择亲本配合力的基础上，GS2具有较高的增产潜力。表1近等基因系杂交组合产量性状表2近等基因系杂交组合产量性状续表1增加GLW2基因的表达的方法是本领域周知的。例如，可通过转入携带GLW2编码基因的表达载体使植株过量表达GLW2；或可以通过强启动子驱动从而增强GLW2基因或其同源基因的表达；或者通过增强子如水稻waxy基因第一内含子、Actin基因第一内含子来增强该GLW2基因的表达。适用于本发明方法的强启动子包括但不限于：35S启动子、水稻的Actin1、Actin2启动子、玉米的Ubi启动子等。抑制GLW2基因表达的方法也是本领域周知的，例如，可通过反义或RNA干扰RNAi或基因敲出来实现。作为本发明的一种优选方式，获得GLW2基因高表达的植株的方法如下：提供携带表达载体的农杆菌，所述的表达载体含有所述的GLW2蛋白的编码序列；将植物细胞、组织或器官与步骤1中的农杆菌接触，从而使所述GLW2蛋白编码序列转入植物细胞，并且整合到植物细胞的染色体上；选择出转入所述GLW2蛋白编码序列的植物细胞、组织或器官；将步骤3中的植物细胞、组织或器官再生成植株。其中，可采用任何适当的常规手段，包括试剂、温度、压力条件来实施此方法。根据本发明的一个具体实施方式，提供了一种GLW2蛋白，其全长的开放阅读框ORF序列如SEQIDNO.1所示，编码一个含有394个氨基酸的蛋白质SEQIDNO.2。本发明的具体实施方式中，构建了GLW2基因过量表达载体PHB-GLW2和GLW2基因敲除载体BGK03-GLW2，通过转基因的方法，将正常的野生型基因GLW2导入到水稻材料日本晴中可使其籽粒粒长、增加粒宽；将GLW2的敲除载体导入GLW2近等基因系植株中，会降低籽粒粒长、增加粒宽。附图说明图1是本发明GLW2基因克隆位点图；图2本发明实施例中BGK03载体结构示意图；图3是本发明实施例中水稻在GLW2过量表达后植株籽粒表型；图4是本发明实施例中水稻在GLW2过量表达后GLW2表达量检测结果；图5是本发明实施例中水稻在GLW2过量表达后株籽粒千粒重统计；图6是本发明实施例中水稻在GLW2过量表达后株籽粒粒长统计；图7是本发明实施例中水稻在GLW2过量表达后株籽粒粒宽统计；图8是本发明实施例中水稻在GLW2敲除后植株籽粒表型；图9是本发明实施例中水稻在GLW2敲除后植株籽粒千粒重统计；图10是本发明实施例中水稻在GLW2敲除后植株籽粒粒长统计；图11是本发明实施例中水稻在GLW2敲除后植株籽粒粒宽统计；图12是本发明实施例中GLW2基因突变品种的表型与正常水稻品种表型的比较图。具体实施方式为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白，以下结合附图及实施例，对本发明进行进一步详细说明。应当理解，此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明，并不用于限定本发明。实施例1GLW2基因水稻转基因试验1、GLW2基因过表达表达载体构建本实施例采用表达载体PHBMao等，2005，PNAS102:12270-12275，可商购作为水稻转基因的载体。该载体编码一个细菌复制起点ori、卡那霉素抗性基因Kanr、潮霉素抗性基因Hygr、除草剂抗性基因Barr、2×35S启动子、NOS基因终止信号序列以及用于连接目的片段的多克隆位点MCS。在限制性内切酶位点可插入GLW2基因或其片段构建成转基因质粒。以正常野生型IR24品种的RNA为模板，合成第一链cDNA，用该GLW2基因ORF序列的5’和3’端的寡核苷酸作为PCR引物SEQIDNO.3和SEQIDNO.4，用高保真酶进行扩增，获得约1185bp的GLW2基因的全长cDNA扩增产物。将该扩增产物通过重组克隆方法重组进载体pHB中，并对重组子进行测序验证。该重组的过渡质粒载体称为PHB-GLW2。其中GLW2基因的表达由自身启动子驱动。5’端的寡核苷酸序列3为SEQIDNO.3：5’-gtctctctctcaagcttggatccATGGCGATGCCGTATGCCTCC-3’3’端的寡核苷酸序列4为SEQIDNO.4：5’-tctagaggatcaattcgagctcTCAGTCACCATTAGTTGATCGAG-3’2、GLW2敲除载体构建利用CRISPRCas9系统构建载体，载体名称为BGK03百格生物技术公司购买，载体结构示意图如图1所示。采用水稻U6启动子，能够高效的用于单子叶植物，特别是水稻；采用加强型玉米UBI启动子，高效表达Cas9蛋白；CaMV35S启动子表达潮霉素抗性基因。首先设计并生成gRNA靶点序列。识别序列一般选择19bp，例如选择靶点序列GCTCATATACAAGTACCTGGTGG下划线部分的TGG为PAM序列，然后设计靶点序列SEQIDNO.5和SEQIDNO.6，将合成的引物加水溶解至10μM，按下列反应体系混合后，95℃加热3分钟，然后以约0.2℃秒缓慢降至20℃推荐采用PCR仪。最后在酶的作用下将上步反应中生成的引物二聚体构建入载体BGK03，构建好的载体名称为BGK03-GLW2。5’端的寡核苷酸序列5为SEQIDNO.5：5’-TGTGTGCTCATATACAAGTACCTGG-3’；3’端的寡核苷酸序列6为SEQIDNO.6：5’-AAACCCAGGTACTTGTATATGAGCA-3’；3、GLW2基因转化水稻试验将上PHB-GLW2和BGK03-GLW2通过冻融法导入农杆菌EHA105。农杆菌EHA105平板4℃保存挑取单菌落于YEP液体培养基Km和Rif各50mgL中，28℃振荡培养12～18h，然后取1～5mL菌液接到100mLYEP液体培养基含乙酰丁香酮100μmolL中，振荡培养4h后测OD值稀至相应浓度OD＝0.5。将新鲜菌液于8000rpm、4℃、5min收集菌体，并重悬于三分之一提及的AAM培养基中。加入放有生长旺盛的胚性愈伤组织的灭菌三角瓶中浸泡25min，再吹干表面菌液，将愈伤组织转接于共培养基上，28℃暗培养2～3d。共培养愈伤组织经无菌水和含Cef500mgL的无菌水漂洗后，在工作台上吹4h左右，转接于预培养基中28℃暗培养5～7d。将预培养的愈伤组织转接于含Hyg和Cef的筛选培养基上继续培养3～4周，再将抗性愈伤组织转接于仅含Hyg的筛选培养基上，筛选1～2次。取抗性愈伤组织转接于分化培养基上，28℃光照分化。分化小苗转接于生根培养基，28℃光照培养3～4周，开放培养炼苗7d左右，最后移栽到大田。获得的再生植株移栽成活后用除草剂或潮霉素筛选转化植株；阳性植株提取叶片总DNA，经PCR进一步鉴定转化植株。用转基因T1代调查育性表型，验证GLW2基因功能。实施例2GLW2基因功能分析如实施例1所述的方法获得水稻GLW2过量表达的转基因植株，分为2组，分别命名为OE1-2、OE2-3，以及正常对照组control，用转基因T1代植株观察水稻籽粒表型，结果如图3～7所示，其中，图4～7中，**为在0.01水平上显著NS为无意对照。从图中可以看出，转GLW2过量表达基因的植株籽粒粒长、粒宽和千粒重较对照有显著增加。表明GLW2过量表达会增加籽粒粒长、粒宽，进而导致千粒重增加。如实施例1所述的方法获得水稻GLW2敲除的转基因植株，分为4组，分别命名为KO1-1、KO1-2、KO1-5以及KO2-3，WT为野生型材料，用转基因T1代植株观察水稻籽粒表型，其中，GLW2敲除植株敲除位点如下表3所示：表3GLW2敲除植株敲除位点分析结果如图8～11所示，图8中NIL-527R为背景的近等基因系，图9～11中，**为在0.01水平上显著。从图8～11可以看出，GLW2基因编辑后的植株的籽粒粒长、粒宽和千粒重较对照有显著降低。表明GLW2敲除会降低籽粒粒长、粒宽，进而导致千粒重降低。从上述分析可以看出，GLW2可以控制水稻籽粒粒长、粒宽，进而影响水稻产量，上调该基因表达有利于植株籽粒粒长、粒宽增加，下调该基因表达则降低植株的籽粒粒长、粒宽。实施例3GLW2基因突变的表型GLW2位自然突变材料GLW2基因突变后的水稻品种307R保存于四川农业大学水稻研究所资源中心，经表性分析和统计分析表明，307R籽粒相比于现有的正常水稻品种527R、IR24以及M63而言，其粒长、粒宽及千粒重较其他水稻材料有显著增加图12和表4。表4正常水稻品种和307R完熟籽粒考种值统计相比于现有技术的缺点和不足，本发明具有以下有益效果：本发明水稻粒型控制基因GLW2为水稻等植物的籽粒粒型调控提供新的技术途径；GLW2基因在去除转基因成分影响方面具有广泛的应用前景；该基因可以显著提高水稻产量，在水稻杂种优势利用中具有广泛的应用前景。以上所述仅为本发明的较佳实施例而已，并不用以限制本发明，凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。

权利要求：1.一种水稻粒型相关蛋白GLW2，其特征在于，其氨基酸序列如SEQIDNO.2所示。2.权利要求1所述的水稻粒型相关蛋白GLW2的编码基因，其特征在于，该编码基因的核苷酸序列如SEQIDNO.1所示。3.含有权利要求2所述的编码基因的表达载体。4.如权利要求3所述的表达载体，其特征在于，所述表达载体包括PHB、BGK03。5.权利要求1所述的水稻粒型相关蛋白GLW2在改良水稻籽粒粒长、粒宽、提高水稻产量中的应用。6.权利要求2所述的编码基因在改良水稻籽粒粒长、粒宽、提高水稻产量中的应用。7.权利要求1所述的水稻粒型相关蛋白GLW2在制备转基因植株中的应用。8.权利要求2所述的编码基因在制备转基因植株中的应用。

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