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申请/专利权人：北京工商大学

摘要：本发明公开了一株用于果蔬采后病害防治的抑菌谱广、效果稳定的毕赤酵母Pichia deserticola菌株BY25及其使用方法与用途。该菌株在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏菌株编号为CGMCC No.14906。该毕赤酵母的使用方法：将菌株活化，用YPD发酵培养，离心，菌体用无菌水配成1×108细胞mL的菌悬液；将苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘或圣女果等果蔬放入菌悬液中，浸泡30秒后取出，风干；放入保鲜盒中，常温贮藏。该毕赤酵母菌株可同时控制苹果青霉病、灰霉病和黑斑病，梨果实青霉病和灰霉病，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、红粉病和茎点霉病，草莓灰霉病和曲霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病，减少采后病害造成的损失，具有很好的应用前景。

主权项：一种用于果蔬采后病害生物防治的毕赤酵母Pichia deserticola菌株BY25，在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏菌株编号为CGMCC No.14906。

全文数据：一株括抗酵母菌PichiadesertiCOIa及其制备与使用方法技术领域[0001]本发明涉及果蔬采后病害生物防治领域，尤其涉及一株用于果蔬采后病害生物防治的毕赤酵母Pichiadeserticola，该菌株对苹果、梨、葡萄、草莓、柑桔、圣女果的主要采后病害均具有显著的防治效果。背景技术[0002]虽然新鲜果蔬品质劣变受诸多因素的影响，但病害是最主要的原因。其中，真菌性病害引起的腐烂变质是果实采后损失中最严重的因素。虽然可以通过农业防治、物理防治、化学防治和生物防治等很多途径进行防治果蔬采后病害，但目前的主要措施是化学防治EckertOgawa，1985，1988。然而，长期使用化学农药不但导致病原菌产生耐药性而降低杀菌效果（Pruskyetal·，1985;Vifiasetal·，1991;HolmesEckert，1999，而且频繁地使用高浓度的化学药剂也增加了果实上的农药残留量，严重威胁人们的健康，并造成环境污染GullionKuijipers，1994。因此，开发安全、高效、无毒、低抗性的果实采后病害控制新技术成为当前世界各国的研究重点（Faliketal.，1995;Tianetal.，2001;Kulakiotuetal.，2004，其中利用生物诘抗菌防治是目前被证明安全有效的新方法WilsonWisniewski，1989;JanisiewiczKoersten，2002〇[0003]迄今为止，国内外已经筛选出了许多对水果采后病原真菌具有明显抑菌效果的细菌、酵母菌和小型丝状真菌，其中利用拮抗酵母菌防治果实采后病害是当前已被证明的安全、高效的新技术，这主要由于大多数病原菌通过伤口入侵果实，而酵母菌主要通过与病原菌进行营养和空间竞争来防治病害，而且拮抗酵母菌能够适应低温、低氧、高二氧化碳等果实采后贮藏条件王友升，2012。[0004]然而，虽然目前国内外报道的拮抗酵母菌有近百种，但大多数拮抗酵母菌的生防效果仅在少数果实上得到验证。而由于同一酵母菌的不同菌株之间的生防效果有很大差异Filonowetal.，1996，因此，大多数诘抗酵母菌的缺乏抑菌谱广、效果稳定的菌株。发明内容[0005]针对上述技术难题，本发明的目的在于提供一株用于果蔬采后病害生物防治的抑菌谱广、效果稳定的毕赤酵母Pichiadeserticola及其使用方法和用途。该种用于果蔬采后病害生物防治的毕赤酵母PichiadeserticolaBY25,在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏菌株编号为CGMCCNo.14906。该毕赤酵母菌株进行果蔬采后病害防治和贮藏保鲜的方法，按照以下步骤进行:将毕赤酵母活化，用YH液体培养基发酵培养，离心得到菌体，将菌体用无菌水配制成浓度为IXIO8细胞mL的菌悬液;将苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘和圣女果等果蔬放入菌悬液中，浸泡30秒后取出，风干;放入保鲜盒中，密封后，放入常温贮藏。[0006]该毕赤酵母BY25的制备方法为，将菌株从-80°c冰箱取出，用YPDA培养基活化，挑取单菌落至YF1D液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min收集菌体，用无菌水洗3遍。所述YPDA培养基是:酵母浸粉IOg，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121°C灭菌30min。所述的毕赤酵母菌株可同时控制苹果青霉病、灰霉病和黑斑病，梨果实青霉病和灰霉病，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、红粉病和茎点霉病，草莓灰霉病和曲霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病。[0007]本发明所提供的菌株是从自然发酵的酿酒葡萄醪液中筛选分离到的对苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘、圣女果采后病害具有显著防治效果的毕赤酵母BY25,可广泛用于果蔬采后病害的防治，减少采后病害造成的损失，具有很好的应用前景。[0008]本发明的优点：（1本发明所提供的毕赤酵母BY25为本实验室从葡萄酒发酵醪液中筛选得到，其对人体无害，安全性高。⑵本发明所使用的毕赤酵母BY25抑菌谱广，可以同时控制苹果青霉病、灰霉病和黑斑病，梨果实青霉病和灰霉病，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、红粉病和茎点霉病，草莓灰霉病和曲霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病。⑶本发明所提供的毕赤酵母BY25在YH培养基中生长良好，易于培养，性状稳定，且单独使用一定浓度该菌悬液就能有效防治多种果蔬采后病害，使用成本低，市场前景广阔。（4本发明所提供的毕赤酵母BY25可以代替化学杀菌剂防治水果采后病害，避免使用化学杀菌剂对人的危害，且不污染环境，社会和生态效益显著。[0009]通过以下实施实例更加详细的说明本发明。以下实施实例仅是说明性的，本发明并不受这些实施实例的限制。附图说明[0010]图1为本发明毕赤酵母PichiadeserticolaBY25的26SrDNAD1D2区核酸序列进化关系图。[0011]图2为毕赤酵母BY25对苹果青霉病、灰霉病和黑斑病的抑制效果。注:Control:无菌水，即对照组;P.d:lX108细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。不同字母代表差异显著PO.05〇[0012]图3为毕赤酵母BY25对毕赤酵母对梨果实青霉病和灰霉病的抑制效果。注：Control:无菌水，即对照组;P.d:IXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。不同字母代表差异显著Ρ〇·05。[0013]图4为毕赤酵母ΒΥ25对，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、红粉病和茎点霉病的抑制效果。注:Control:无菌水，即对照组;P.d:IXIO8细胞mL的毕赤酵母ΒΥ25菌悬液。不同字母代表差异显著P〇.〇5。[0014]图5为毕赤酵母BY25对草莓灰霉病和曲霉病的抑制效果。注:Control:无菌水，即对照组;P.d:IXIO8细胞mL的毕赤酵母菌悬液。不同字母代表差异显著P0.05。[0015]图6为毕赤酵母BY25对柑橘青霉病的抑制效果。注:Control:无菌水，即对照组；P.d:IXIO8细胞mL的毕赤酵母菌悬液。不同字母代表差异显著P0.05。[0016]图7为毕赤酵母BY25对圣女果灰霉病和曲霉病的抑制效果。注:Control:无菌水，即对照组;P.CUlXlO8细胞mL的毕赤酵母菌悬液。不同字母代表差异显著P0.05。具体实施方式[0017]实施例1:毕赤酵母Pichiadeserticola菌株BY25的生物学特性[0018]1.形态学特征[0019]IYPDA培养基（酵母浸粉1%，蛋白胨2%，葡萄糖2%，琼脂1.8%，121°C灭菌20min上26°C培养48h，菌落呈圆形、白色，菌落边缘光滑圆润。细胞形态呈椭球型。[0020]2在YPDA液体培养基中培养24h后，不形成醭，菌液浑浊，有沉淀，镜检酵母细胞呈椭圆形，芽殖。[0021]2.分子生物学鉴定[0022]以通用正向引物NL-I5’-GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG-3’）和反向引物NL-45’-GGTCCGTGTTTCAAGACGG-3’）进行PCR扩增酵母26SrDNAD1D2区核酸序列，将PCR产物的测序结果输入网站肩w·NCBI·nlm·nih·goV进行BLAST，从GenBank数据库中下载同源序列，通过MEGA6软件构建进化树如图1，确定筛选到的菌株为毕赤酵母Pichiadeserticola。[0023]本发明的毕赤酵母BY25已保藏于中国北京市朝阳区北辰西路1号院3号的中国科学院微生物研究所的中国微生物菌株保藏委员会普通微生物中心，保藏时间为2017年11月15日，保藏编号为CGMCCNo.14906,建议的分类命名为毕赤酵母Pichiadeserticola。[0024]实施实例2毕赤酵母BY25对苹果青霉病、灰霉病和黑斑病的抑制效果[0025]1.实验方案[0026]将毕赤酵母BY25从-80°C冰箱取出，用YPDA培养基酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121°C灭菌30min活化，挑取单菌落至YF1D液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为IXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。[0027]将青霉病菌Penicilliumexpansum、灰霉病菌Botrytiscinerea或链格抱菌Alternariatenuissima在PDA培养基平板上激活，26°C下培养7〜14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5XIO4细胞mL的青霉病菌、灰霉病菌或链格孢菌孢子悬浮液。[0028]将健康无损的苹果果实用2%次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打5个孔，表面伤口为2_直径）X2mm深）。每个伤口处等量加入20yL以下处理液：（11\108细胞1^的毕赤酵母8¥25菌悬液；（2无菌蒸馏水。411后接种2^1^青霉病菌、灰霉病菌或链格孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95%，置于室温25°C4天后记录果实发病率，以此评价毕赤酵母BY25的抑菌效果。发病率的计算公式为:发病率（％=发病的果实果实总数X100%。[0029]2.试验结果[0030]按照上述步骤试验，统计苹果的发病率结果如下：[0031]1毕赤酵母BY25对苹果青霉病的抑制效果[0032]如图2所示，对照组苹果青霉病发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的苹果青霉病发病率为53%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制苹果青霉病病害。[0033]2毕赤酵母BY25对苹果灰霉病的抑制效果[0034]如图2所示，对照组苹果灰霉病的发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的苹果灰霉病发病率为6%，因此毕赤酵BY25能够有效控制苹果灰霉病病害。[0035]3毕赤酵母BY25对苹果黑斑病的抑制效果[0036]如图2所示，对照组苹果黑斑病发病率为100%，经过BY25处理的苹果黑斑病发病率为61%，因此BY25能够有效控制苹果黑斑病病害。[0037]实施实例3毕赤酵母BY25对梨果实青霉病和黑斑病的抑制效果[0038]1.实验方案[0039]将毕赤酵母BY25从-80°C冰箱取出，用YPDA培养基酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水IOOOml，自然pH，121°C灭菌30min活化，挑取单菌落至YF1D液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为IXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。[0040]将青霉病菌Penicilliumexpansum或灰霉病菌Botrytiscinerea在PDA培养基平板上激活，26°C下培养7〜Hd，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5XIO4细胞mL的青霉病菌或灰霉病菌孢子悬浮液。将健康无损的梨果实用2%次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打5个孔，表面伤口为2_直径）X2mm深）。每个伤口处等量加入20yL以下处理液：（11XIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液；（2无菌蒸馏水。4h后接种20yL青霉病菌或灰霉病菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95%，置于室温25°C4天后记录果实发病率，以此评价毕赤酵母BY25的抑菌效果。发病率的计算公式为:发病率（％=发病的果实果实总数X100%。[0041]2.试验结果[0042]按照上述步骤试验，统计梨果实的发病率结果如下：[0043]1毕赤酵母BY25对梨果实青霉病的抑制效果[0044]如图3所示，对照组梨果实青霉病发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的果实青霉病发病率为73%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制梨果实青霉病病害。[0045]2毕赤酵母BY25对梨果实灰霉病的抑制效果[0046]如图3所示，对照组梨果实灰霉病的发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的梨果实灰霉病发病率为〇,因此毕赤酵母BY25能够有效控制梨果实灰霉病病害。[0047]实施实例4毕赤酵母BY25对葡萄采后病害的抑制效果[0048]1.实验方案[0049]将毕赤酵母BY25从-80°C冰箱取出，用YPDA培养基酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水IOOOml，自然pH，121°C灭菌30min活化，挑取单菌落至YF1D液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为IXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。[0050]将灰霉菌（Botrytisporri、刺抱曲霉Aspergillusaculeatus、链格抱菌Alternariaeichhorniae、粉红单端抱（Trichotheciumroseum或莖点霉菌（Phomasp.在PDA培养基平板上激活，26°C下培养7〜14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5XIO4细胞mL的灰霉菌、刺孢曲霉、链格孢菌、粉红单端孢或茎点霉菌孢子悬浮液。[0051]将健康无损的梨果实用2%次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2mm值径）X2mm深）。每个伤口处等量加入20yL以下处理液：（11\108细胞1^的毕赤酵母8¥25菌悬液；（2无菌蒸馏水。411后接种2^1^灰霉菌、刺孢曲霉、链格孢菌、粉红单端孢或茎点霉菌孢子悬浮液孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95%，置于室温25°C4天后记录果实发病率，以此评价毕赤酵母BY25的抑菌效果。发病率的计算公式为:发病率（％=发病的果实果实总数X100%。[0052]2.试验结果[0053]按照上述步骤试验，统计葡萄果实的发病率结果如下：[0054]1毕赤酵母BY25对葡萄果实灰霉病的抑制效果[0055]如图4所示，对照组葡萄果实灰霉病发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的葡萄果实灰霉病发病率为〇,因此毕赤酵母BY25能够有效控制葡萄果实灰霉病病害。[0056]2毕赤酵母BY25对葡萄果实曲霉病的抑制效果[0057]如图4所示，对照组葡萄果实曲霉病的发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的葡萄果实曲霉病发病率为35%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制由造成的葡萄果实曲霉病病害。[0058]3毕赤酵母BY25对葡萄果实黑斑病的抑制效果[0059]如图4所示，对照组葡萄果实黑斑病的发病率为100%，经过毕赤酵母BY25的葡萄果实黑斑病发病率为67%，因此毕赤酵母BY25能够控制葡萄果实黑斑病病害。[0060]⑷毕赤酵母BY25对葡萄红粉病的抑制效果[0061]如图4所示，对照组葡萄镰孢霉病的发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的葡萄镰孢霉病发病率为80%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制葡萄镰孢霉病病害。[0062]5毕赤酵母BY25对葡萄果实茎点霉病的抑制效果[0063]如图4所示，对照组葡萄茎点霉病的发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的葡萄茎点霉病发病率为67%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制葡萄茎点霉病病害。[0064]实施实例5毕赤酵母BY25对草莓果实灰霉病和曲霉病的抑制效果[0065]1.实验方案[0066]将毕赤酵母BY25从-80°C冰箱取出，用YPDA培养基酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水IOOOml，自然pH，121°C灭菌30min活化，挑取单菌落至YF1D液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为IXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。[0067]将灰霉病菌（Botrytisporri或刺抱曲霉Aspergillusaculeatus在]3DA培养基平板上激活，26°C下培养7〜14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5XIO4细胞mL的灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。将健康无损的草莓果实用2%次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2_直径）X2mm深）。每个伤口处等量加入20yL以下处理液：（IIXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液；（2无菌蒸馏水。4h后接种20yL灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95%，置于室温（25°C4天后记录果实发病率，以此评价毕赤酵母BY25的抑菌效果。发病率的计算公式为:发病率（％=发病的果实果实总数X100%。[0068]2.试验结果[0069]按照上述步骤试验，统计草莓果实的发病率结果如下：[0070]1毕赤酵母BY25对草莓果实灰霉病的抑制效果[0071]如图5中所示，对照组草莓果实灰霉病发病率为69%，经过毕赤酵母BY25处理的草莓果实灰霉病发病率为20%，因此毕赤酵母能够有效控制草莓果实灰霉病病害。[0072]2毕赤酵母BY25对草莓果实曲霉病的抑制效果[0073]如图5中所示，对照组草莓果实曲霉病的发病率为60%，经过毕赤酵母BY25处理的草莓果实曲霉病发病率为0,因此毕赤酵母能够有效控制草莓果实曲霉病病害。[0074]实施实例6毕赤酵母BY25对柑橘青霉病的抑制效果[0075]1.实验方案[0076]将毕赤酵母BY25从-80°C冰箱取出，用YPDA培养基酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水IOOOml，自然pH，121°C灭菌30min活化，挑取单菌落至YF1D液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为IXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。[0077]将青霉病菌（Penicilliumitalicum在PDA培养基平板上激活，26°C下培养7〜14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5XIO4细胞mL的青霉病菌孢子悬浮液。[0078]将健康无损的草莓果实用2%次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2mm直径）X2mm深）。每个伤口处等量加入20yL以下处理液：（11\108细胞1^的毕赤酵母8¥25菌悬液；（2无菌蒸馏水。411后接种2^1^青霉病菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95%，置于室温25°C4天后记录果实发病率，以此评价毕赤酵母BY25的抑菌效果。发病率的计算公式为:发病率（％=发病的果实果实总数X100%。[0079]2.试验结果[0080]按照上述步骤试验，统计柑橘果实的发病率结果如图6所示，对照组柑橘果实青霉病发病率为73%，经过毕赤酵母BY25处理的柑橘果实青霉病发病率为27%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制柑橘果实青霉病病害。[0081]实施实例7毕赤酵母BY25对圣女果灰霉病和曲霉病的抑制效果[0082]1.实验方案[0083]将毕赤酵母BY25从-80°C冰箱取出，用YPDA培养基酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水IOOOml，自然pH，121°C灭菌30min活化，挑取单菌落至YF1D液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为IXIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液。[0084]将灰霉病菌（Botrytisporri或刺抱曲霉（Aspergillusaculeatus在]3DA培养基平板上激活，26°C下培养7〜14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5XIO4细胞mL的灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。将健康无损的圣女果用2%次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2_直径）X2mm深）。每个伤口处等量加入20yL以下处理液：（11XIO8细胞mL的毕赤酵母BY25菌悬液；（2无菌蒸馏水。4h后接种20yL灰霉病菌（Botrytisporri或刺孢曲霉Aspergillusaculeatus孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95%，置于室温25°C4天后记录果实发病率，以此评价毕赤酵母菌株BY25的抑菌效果。发病率的计算公式为:发病率（％=发病的果实果实总数X100%。[0085]2.试验结果[0086]按照上述步骤试验，统计圣女果发病率结果如下：[0087]1毕赤酵母BY25对圣女果灰霉病的抑制效果[0088]如图7中所示，对照组圣女果灰霉病发病率为97%，经过毕赤酵母BY25处理的圣女果灰霉病发病率为53%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制由灰霉病菌造成的圣女果灰霉病病害。[0089]2毕赤酵母BY25对圣女果曲霉病的抑制效果[0090]如图7中所示，对照组圣女果曲霉病的发病率为100%，经过毕赤酵母BY25处理的圣女果曲霉病发病率为26%，因此毕赤酵母BY25能够有效控制圣女果曲霉病病害。

权利要求：1.一种用于果蔬采后病害生物防治的毕赤酵母PichiadesertiCOIa菌株BY25,在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏菌株编号为CGMCCNo.14906。2.权利要求1所述的毕赤酵母BY25进行果蔬采后病害防治和贮藏保鲜的方法，其特征在于按照以下步骤进行:将毕赤酵母活化，用YPD液体培养基发酵培养，离心得到菌体，将菌体用无菌水配制成浓度为IXIO8细胞mL的菌悬液;将果蔬放入菌悬液中，浸泡30秒后取出，风干;放入保鲜盒中，密封后，放入常温贮藏。3.根据权利要求2所述的果蔬采后病害防治和贮藏保鲜的方法，其特征在于，其中所述果蔬为苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘和圣女果。4.根据权利要求1所述的毕赤酵母BY25的制备方法，其特征在于，将菌株从-80°C冰箱取出，用YPDA培养基活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26°C、200rmin条件下培养24h，4000rpm离心5min收集菌体，用无菌水洗3遍。5.根据权利要求4所述的毕赤酵母BY25的制备方法，其特征在于所述YPDA培养基是:酵母浸粉l〇g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121°C灭菌30min。6.—种如权利要求1所述的毕赤酵母BY25的用途，其特征在于：它用于同时控制苹果青霉病、灰霉病和黑斑病，梨果实青霉病和灰霉病，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、红粉病和茎点霉病，草莓灰霉病和曲霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病。

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