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一种弱化hemB基因表达提高大肠杆菌合成5‑氨基乙酰丙酸的方法 

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申请/专利权人:江南大学

摘要:本发明公开了一种弱化hemB基因表达提高大肠杆菌合成5‑氨基乙酰丙酸的方法,属于代谢工程和微生物发酵领域。本发明在使用载体pRSFDuet‑1过量表达谷氨酰‑tRNA还原酶,谷氨醛氨基转移酶和粪卟啉原III氧化酶以及使用载体pETDuet‑1过量表达尿卟啉原III合酶的基础上,通过在基因组水平改造hemB基因的启动子进而调控其表达,考察其对ALA积累的影响。通过摇瓶发酵验证,目的产物ALA产量有明显提高,30h时ALA产量为2680mgL。

主权项:一种提高大肠杆菌工程菌株产5‑氨基乙酰丙酸的方法,其特征在于,是在基因组水平削弱大肠杆菌工程菌株hemB基因的表达;所述在基因组水平削弱hemB基因的表达,是在基因组水平将hemB基因的启动子替换为在大肠杆菌生长稳定期强度减弱的启动子;所述在大肠杆菌生长稳定期强度减弱的启动子是fliC基因的启动子,来源于大肠杆菌,序列如SEQ ID NO.5所示。

全文数据:一种弱化hemB基因表达提高大肠杆菌合成5-氨基乙酰丙酸的方法技术领域[0001]本发明涉及一种弱化hemB基因表达提高大肠杆菌合成5-氨基乙酰丙酸的方法,属于代谢工程和微生物发酵领域。背景技术[0002]5-氨基乙酰丙酸(5-aminolevulinicacid,ALA,分子式为C5O3NH9,分子量为131.13,恪点为149-151°C,它是生物体合成叶绿素、血红素、维生素Bi2等关键前体物质。ALA已广泛应用于医学和农业领域,作为一种安全、选择、渗透性好的光动力学药物已成功应用于皮肤癌、膀胱癌、消化道癌、肺癌等的诊断和光动力治疗中。另外,由于ALA在自然界中可降解,作为一种无公害的新型光活化农药、除草剂以及植物生长调节剂等在农药领域应用也非常广泛。[0003]目前,ALA主要通过化学法合成,最早出现在上世纪50年代,到20世纪90年代,相关研究开始大量开展并取得一定的成绩。但化学合成存在许多缺点,如反应步骤繁琐,副产物多,分离提纯困难,ALA得率也较低,并且环境污染严重。近年来,微生物发酵生产ALA已成为研究的热点。自然界中,ALA的生物合成存在两条途径,一条是C4途径,琥珀酰-CoA和甘氨酸在5-氨基乙酰丙酸合成酶ALAS,hemA编码作用下生成ALA的一步酶促反应,主要存在于一些光合细菌、真菌以及动物体内。另外一条是广泛存在于植物、藻类以及细菌如大肠杆菌)中的C5途径,首先谷氨酸在谷氨酰-tRNA合成酶GluRS,gltX编码催化下,生成谷氨酰-tRNA,然后,谷氨酰-tRNA在谷氨酰-tRNA还原酶GluTR,hemA编码作用下生成谷氨酸-1-半醛GSA,最后GSA由谷氨酸-1-半醛-2,1-氨基转移酶GSA-AT,hemL编码催化生成ALA。[0004]早期,人们筛选到产ALA的光合细菌类球红细菌Rhodobactersphaeroides,通过诱变育种筛选ALA的高产菌株,并通过发酵优化等方法使得ALA的产量达到7.2gL。但由于光合细菌的特殊性,其成本较高,不适合大规模的工业化生产。随着基因工程技术的成熟,Mariet和Zeikus选用大肠杆菌作为宿主细胞,采用基因工程的技术表达来源于R.sphaeroides的ALA合酶基因(hemA,ALA产量为3·7981^Χίθetal.等利用过量表达R.sphaeroides来源的hemA基因,经发酵优化,ALA产量最高达到5.2gL。但目前以C4途径为基础的生物转化由于添加前体琥泊酸和甘氨酸生产ALA成本相对较高,Kangetal.等通过分析大肠杆菌中C5途径的调控机制,发现ALA合成C5途径的关键基因hemA和hemL,同时实现了以葡萄糖为唯一碳源发酵生产ALA。[0005]由于ALA是血红素合成途径的关键前体物质(图1,而血红素是细胞生长所必需的,为了进一步促进ALA的积累,本发明在表达5-氨基乙酰丙酸C5合成途径关键酶基因hemL和hemA和表达来源于大肠杆菌血红素生物合成途径基因hemD及hemF的基础上,通过在基因组水平改造ALA下游5-氨基乙酰丙酸脱水酶编码基因hemB的启动子,弱化hemB基因的表达水平,实现ALA产量的进一步提高。发明内容[0006]本发明要解决的技术问题是提供一种提高大肠杆菌工程菌株产5-氨基乙酰丙酸的方法,是在基因组水平削弱大肠杆菌工程菌株hemB基因的表达,实现ALA产量的进一步提尚。[0007]所述在基因组水平削弱hemB基因的表达,是在基因组水平将hemB基因的启动子替换为在大肠杆菌生长稳定期强度减弱的启动子,例如基因动子。[0008]在本发明的一种实施方式中,所述在大肠杆菌生长稳定期强度减弱的启动子是fliC基因的启动子,来源于大肠杆菌,序列如SEQIDNO.5所示。[0009]在本发明的一种实施方式中,所述大肠杆菌工程菌株,是以大肠杆菌为宿主,使用不同拷贝数的表达载体组合过量表达谷氨酰-tRNA还原酶hemA编码)、谷氨醛氨基转移酶hemL编码)、尿卟啉原III合酶hemD编码和粪卟啉原III氧化酶hemF编码)。[0010]在本发明的一种实施方式中,所述大肠杆菌是EscherichiacoliBL21DE3;所述不同拷贝数表达载体分别为pRSFDuet-Ι和pETDuet-Ι〇[0011]在本发明的一种实施方式中,所述hemL的核苷酸序列如SEQIDNO.1所示。[0012]在本发明的一种实施方式中,所述hemA的核苷酸序列如SEQIDNO.2所示。[0013]在本发明的一种实施方式中,所述hemD的核苷酸序列如SEQIDNO.3所示。[0014]在本发明的一种实施方式中,所述hemF的核苷酸序列如SEQIDNO.4所示。[0015]在本发明的一种实施方式中,所述大肠杆菌工程菌株以pRSFDuet-Ι串联表达hemA、hemL、hemF,并以pETDuet_l表达hemD〇[0016]本发明还提供了一种5-氨基乙酰丙酸产量提高的重组大肠杆菌,是将大肠杆菌基因组中hemB基因的启动子替换为fIiC基因的启动子,并转入质粒pRSFDuet-1-hemA-hemL-hemF和pETDuet-1-hemD。[0017]所述重组大肠杆菌的构建方法,是通过基因重组将大肠杆菌基因组上的hemB基因的启动子替换为fIiC基因的启动子,然后将质粒pRSFDuet-1-hemA-hemL-hemF和pETDuet-Ι-hemD转化改造的菌株E.coliBL21DE3PfliC中,构建重组工程菌株PfliC-LADF-6:Ε·coliBL21DE3PfliCpRSFDuet-l-hemA-hemL-hemFpETDuet-l-hemD〇[0018]应用所述重组大肠杆菌生产5-氨基乙酰丙酸时,可将菌株活化后,以2%接种量转接发酵培养基中发酵,Oh时添加0.1-0.5mMIPTG诱导基因表达以及氨苄青霉素(100ygmL和卡那霉素50ygmL,30-37°C,200rmin培养,周期28-36h。[0019]本发明以表达C5途径关键基因hemL和hemA以及ALA代谢途径的下游基因hemD和hemF的工程菌为出发菌株,通过在基因组水平改造hemB基因的启动子,所得大肠杆菌工程菌株在3L发酵罐中积累5-氨基乙酰丙酸4.08gL,有效地利用C5途径促进5-氨基乙酰丙酸的合成,实现了ALA产量的进一步提高。附图说明[0020]图1:大肠杆菌中血红素合成途径。[0021]图2:基因组改造hemB启动子菌落PCR电泳图。M:DL5000Maker;A:对照;B:改造hemB启动子菌株;C:改造hemB启动子菌株。[0022]图3:改造hemB启动子对重组大肠杆菌合成ALA的影响。(a250mL摇瓶发酵结果;A:LADF-6;B:PfliC-LADF-6。⑹重组大肠杆菌在3L发酵罐发酵结果。具体实施方式[0023]ALA分析方法:[0024]采用Mauzerall和Granick的分光光度法:将样品稀释至2mL,加入ImL的乙酸钠缓冲液,0.5mL的乙酰丙酮,然后煮沸15min。冷却至室温,取2mL的反应液至新管中,然后加入2mL的ModifiedEhrlich’s试剂,反应20min,利用分光光度计554nm下检测。[0025]培养基:[0026]斜面培养基gL:蛋白胨10,氯化钠10,酵母粉5.0,琼脂20,pH7.0;[0027]种子培养基gL:蛋白胨10,氯化钠10,酵母粉5.0,pH7.0,装液量20mL250mL;[0028]发酵培养基(gL:NH42S〇4l5,KH2P〇45.0,Na2HP〇4·I2H2O15,MgS〇4·7H201.0,酵母提取物1.0,葡萄糖20,pH7.0。[0029]培养条件:[0030]菌种培养:甘油管划线,然后挑取单菌落划线平板37°C培养,作为种子来源;[0031]种子培养:平板挑取菌体,37°C,200rmin,根据要求添加氨苄青霉素100ygmL,卡那霉素50ygmL,培养约12h,转接发酵培养基;[0032]发酵培养:以2%接种量转接,Oh时添加0.1-0.5mMIPTG诱导基因表达,根据需要添加苄青霉素(l〇〇ygmL以及卡那霉素50ygmL,30-37°C,200rmin培养,周期28-36h。[0033]大肠杆菌工程菌LADF_6:E.coliBL21DE3pRSFDuet-l-hemLA-hemFpETDuet-1-hemD的构建方法,参见发明名称为“一种利用组合调控策略提高5-氨基乙酰丙酸产量的方法”,申请号为201410274656.2的专利申请。[0034]实施例1同源重组片段Pl-Kan-PfliC-P2的组装[0035]以大肠杆菌基因组为模板分别扩增hemB基因的启动子上游同源臂Pl934bp、下游同源臂P2726bp和fIiC启动子PfIiC130bp,以质粒pKD13为模板扩增筛选标记抗性基因Kan1330bp。然后以融合PCR的方法将4个片段组装,S卩Pl-Kan-PfliC-P23120bp。[0036]引物如下:[0037]上游同源臂Pl[0038]Fl:CACTTGTATCAAATGTCTCATTTGTGTG[0039]Rl:CGAAGCAGCTCCAGCCTACACTTATTTATAGCTGTTGGTTATTATTTTTTGG[0040]抗性基因Kan[0041]F2:TAACCAACAGCTATAAATAAGTGTAGGCTGGAGCTGCTTCG[0042]R2:TTTCAAAAACAGCCATTTTTTGATAAGCTGTCAAACATGAGAATTAATT[0043]启动子PfIiC[0044]F3:TCATGTTTGACAGCTTATCAAAAAATGGCTGTTTTTGAAAAAAATT[0045]R3:CGTTGGATTAAGTCTGTCATGATTCGTTATCCTATATTGCAAGTC[0046]下游同源臂P2[0047]F4:GCAATATAGGATAACGAATCATGACAGACTTAATCCAACGCCC[0048]R4:AGTCTGCGCCCTGGGCTT[0049]实施例2hemB基因启动子改造[0050]启动子改造方法采用Red重组一步法敲除:[0051]1将质粒pKD46转化E.coliBL21DE3,该质粒为温度敏感型,菌体培养温度为30°C。挑取在斜面培养基中培养的单菌落接种于添加100mgL氨苄青霉素的SOB培养基中,30°C过夜培养约12h后,以2%接种量转接于添加100mgL氨苄青霉素的SOB培养基中继续培养至0D600nm约0.1-0.2时,添加终浓度IOmM的L-阿拉伯糖诱导重组酶的表达,继续培养至00600]11]1约0.6时,冰浴菌液约10111;[11。4°^,40001'111;[11离心10111;[11收集菌体,然后用无菌10%的甘油水溶液洗涤菌体三次,浓缩100倍,制备感受态细胞。[0052]2利用电穿孔仪,2500v,电击重组片段Pl-Kan-PfliC-P2,迅速加入600μϋΚ浴的SOC培养基,然后转入无菌的EP管中,30°C下后培养2h,然后涂布Kan抗性平板,30°C培养。挑取单克隆,利用菌落PCR验证(图2,与对照扩增片段大小为1830bp相比,改造启动子后扩增片段大小约为3000bp,说明启动子改造正确,进一步测序验证。[0053]3辅助质粒pKD46的消除,将改造正确的菌株在37°C下过夜培养,划线于LB平板上,待单菌落长出,分别在无氨苄抗性和含氨苄抗性的平板上点板,在无氨苄抗性的平板上生长而在含氨苄抗性的平板上不生长的菌,说明质粒已消除成功。[0054]4抗性基因的去除采用辅助质粒pCP20,将已成功消除质粒pKD46的菌株转化温度敏感型的质粒PCP20,挑取单菌落过夜培养后,按照1%vv的接种量转入装有20mLLB培养基的250mL的三角瓶中,30°C培养至0D600nm为0.1时,转入42°C条件下培养12h以上,然后将菌液划线无抗性的LB平板,挑取单克隆,分别在无抗性、含氨苄抗性和含卡纳抗性的LB平板上点板,以验证抗性基因和PCP20质粒是否成功去除。[0055]实施例3重组菌发酵验证[0056]菌株:[0057]LADF-6:E.coliBL21DE3pRSFDuet-l-hemLA-hemFpETDuet-l-hemD〇[0058]PfliC-LADF-6:E.coliBL21DE3PfliCpRSFDuet-l-hemLA-hemFpETDuet-1-hemD〇[0059]重组大肠杆菌PfliC-LADF-6与对照菌LADF-6分别在250mL三角瓶中发酵,接种量1%,初始葡萄糖浓度为20gL,Oh添加0.1-0.5mMIPTG诱导以及氨苄青霉素(100mgL和卡那霉素50mgL,IOh后ALA开始大量积累,在30h左右产量最高,为2680mgL,相比对照产量提高25%以上(图3a。[0060]将重组大肠杆菌PfIiC-LADF-6在3L发酵罐中放大培养,接种量2%,初始葡萄糖浓度约为35gL,Oh添加0·1-0·5mMIPTG诱导以及氨苄青霉素(100mgL和卡那霉素(50mgL,在30h左右产量最高,为4.08gL图3b。[0061]虽然本发明已以较佳实施例公开如上,但其并非用以限定本发明,任何熟悉此技术的人,在不脱离本发明的精神和范围内,都可做各种的改动与修饰,因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。

权利要求:1.一种提高大肠杆菌工程菌株产5-氨基乙酰丙酸的方法,其特征在于,是在基因组水平削弱大肠杆菌工程菌株hemB基因的表达;所述在基因组水平削弱hemB基因的表达,是在基因组水平将hemB基因的启动子替换为在大肠杆菌生长稳定期强度减弱的启动子;所述在大肠杆菌生长稳定期强度减弱的启动子是fliC基因的启动子,来源于大肠杆菌,序列如SEQIDNO.5所示。2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述大肠杆菌工程菌株,是以大肠杆菌为宿主,过量表达hemA编码的谷氨酰-tRNA还原酶、hemL编码的谷氨醛氨基转移酶、hemD编码编码的尿卟啉原III合酶和hemF编码的粪卟啉原III氧化酶。3.根据权利要求1或2所述的方法,其特征在于,所述大肠杆菌工程菌株以pRSFDuet-1串联表达hemA、hemL、hemF,并以pETDuet_l表达hemD〇4.一种5-氨基乙酰丙酸产量提高的重组大肠杆菌,其特征在于,是将大肠杆菌基因组中hemB基因的启动子替换为fliC基因的启动子,并以pRSFDuet-Ι串联表达hemA、hemL、hemF,并以pETDuet-1表达hemD;所述fliC基因的启动子来源于大肠杆菌,序列如SEQIDNO.5所示。5.—种构建权利要求4所述重组大肠杆菌的方法,其特征在于,是通过基因重组将大肠杆菌基因组上的hemB基因的启动子替换为fliC基因的启动子,然后以pRSFDuet-Ι串联表达hemA、hemL、hemF,并以pETDuet_l表达hemD〇6.权利要求4所述重组大肠杆菌在生产5-氨基乙酰丙酸中的应用。

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